PhD complete document for reviewers

129 Pages·2016·30.92 MB·English

N°:

 2009
 ENAM
 XXXX

UNIVERSITÉ PARIS-EST

T H È S E

Pour obtenir le grade de docteur délivré par

Ecole doctorale Sciences de la Vie et de la Santé

Spécialité : Pathologie et recherche clinique

présentée et soutenue pu bliquement par

Fang FANG

Le 15 Avril 2016

Susceptibility to acaricides and genetic diversity of

Sarcoptes scabiei from animals

  Directeur de thèse : Pr Jacques GUILLOT

Unité de Pa
 rasitologie, Mycologie, Dermatologie, Ecole nationale vétérinaire d'Alfort, Maisons-Alfort, France

  EA 7380 Dynamyc, Faculté de Médecine, Créteil, France
Jury
M. Pascal DELAUNAY, MCU-PH, Faculté de Médecine de Nice, France Rapporteur
M. Michel FRANC, Professeur, Parasitologie, Ecole nationale vétérinaire de Toulouse, France Rapporteur
Mme Weiyi HUANG, Professeur, Faculté vétérinaire, Université du Guangxi, Chine Examinateur
Mme Françoise BOTTEREL, Professeur, Equipe Dynamyc, Paris-Est Créteil, France Examinateur
Mme Lénaïg HALOS, Docteur vétérinaire, Merial, Lyon, France Examinateur
M. Olivier CHOSIDOW, Professeur, Dermatologie, Hôpital Henri Mondor, Créteil, France Examinateur
M. Rémy DURAND, MCU-PH, Parasitologie, Hôpital Avicenne, Bobigny, France Examinateur
1

Acknowledgements

On
 the
 occasion
 of
 the
 completion
 of
 my
 dissertation
 and
 subsequent
 PhD,
 I
 would

like
 to
 appreciate,
 first
 and
 foremost,
 my
 director
 Professor
 Jacques
 Guillot.
 It
 has
 been
 an

honor
 to
 be
 his
 PhD
 student.
 Jacques
 is
 someone
 who
 is
 nice
 and
 cheerful,
 who
 is
 always

optimistic
 and
 work
 productively.
 I
 have
 learned
 a
 lot
 from
 him
 under
 the
 influence
 of
 his

good
 characters
 during
 the
 whole
 period
 of
 my
 PhD
 study.
 I
 really
 appreciate
 all
 his

contributions
 of
 time,
 ideas,
 and
 funding
 for
 my
 PhD.

I
 am
 grateful
 to
 the
 China
 Scholarship
 Council,
 which
 provided
 a
 PhD
 grant
 for
 me
 and

gave
 me
 the
 opportunity
 to
 study
 in
 France.

I
 am
 particularly
 thankful
 to
 the
 jury
 members
 of
 my
 thesis:
 Dr
 Pascal
 Delaunay
 and
 Pr

Michel
 Franc
 who
 spent
 time
 to
 review
 my
 thesis,
 and
 Pr
 Weiyi
 Huang,
 Pr
 Françoise

Botterel,
 Dr
 Lénaïg
 Halos,
 Pr
 Olivier
 Chosidow
 and
 Dr
 Rémy
 Durand
 who
 kindly
 accepted

to
 be
 members
 of
 the
 PhD
 jury.

Special
 thanks
 to
 Dr
 Sarah
 Bonnet
 from
 BIPAR,
 who
 participated
 to
 my
 “Comité
 de

pilotage”
 and
 gave
 good
 suggestions
 on
 my
 PhD
 project.

I
 would
 like
 to
 thank
 every
 members
 of
 the
 research
 team
 Dynamyc:
 Elise
 Melloul,

Charlotte
 Bernigaud,
 Stéphanie
 Luigi,
 Françoise
 Botterel,
 Françoise
 Foulet,
 Veronica
 Risco,

Pascal
 Arné,
 René
 Chermette.
 I
 would
 like
 to
 express
 my
 deeply
 gratitude
 to
 Charlotte
 and

Elise,
 two
 other
 PhD
 students,
 who
 helped
 me
 a
 lot.
 We
 worked
 and
 travelled
 together,

had
 lots
 of
 fun.
 Thanks
 to
 them,
 my
 PhD
 life
 has
 been
 cheerful
 and
 colorful.

I
 would
 like
 to
 thank
 the
 teachers
 of
 Parasitology
 group
 in
 EnvA.
 To
 Jacques
 Guillot,

Bruno
 Polack,
 René
 Chermette
 and
 Radu
 Blaga,
 for
 their
 excellent
 classes
 in
 veterinary

Parasitology.
 To
 Odile
 Crosaz
 who
 is
 always
 nice
 and
 ready
 to
 answer
 my
 questions
 with

patience.
 To
 Radia
 Guechi
 who
 helped
 me
 in
 experiment
 preparation.
2

Thanks
 to
 the
 members
 of
 the
 Parasitology
 department
 of
 Avicenne
 Hospital:
 Dr

Arezki
 Izri
 who
 provided
 some
 essential
 oils
 and
 products,
 Candy
 Kerdalidec
 who
 helped

me
 with
 in
 vitro
 tests,
 Rémy
 Durand
 and
 Valérie
 Andriantsoanirina
 who
 were
 in
 charge
 of

the
 molecular
 analysis.

Thanks
  to
  Thomas
  Lilin
  and
  Francis
  Moreau
  from
  the
  Centre
  de
  Recherche

Biomédicale.

I
 really
 appreciate
 my
 families
 and
 friends.
 Words
 cannot
 express
 how
 grateful
 I
 am
 to

my
 mom
 and
 dad
 for
 all
 their
 love
 and
 support
 on
 me.
 Million
 thanks
 to
 all
 my
 friends,

without
 them,
 my
 life
 won’t
 have
 been
 so
 happy.
 My
 appreciation
 especially
 goes
 to
 my

dear
 boyfriend,
 who
 is
 ready
 to
 encourage
 me
 no
 matter
 day
 or
 night.
 His
 unconditional

love
 and
 support
 has
 enlightened
 me
 not
 only
 through
 PhD,
 but
 also
 through
 life.

Last
 but
 not
 the
 least,
 I
 would
 like
 to
 express
 my
 deepest
 gratitude
 to
 the
 French

people,
 who
 have
 always
 attached
 great
 importance
 to
 protecting
 their
 heritages
 and

cultures
 as
 well
 as
 those
 around
 the
 world.
 Thanks
 to
 their
 effort
 and
 persistent
 love
 for

art,
 I
 was
 able
 to
 admire
 the
 fabulous
 museums,
 the
 splendid
 castles
 and
 all
 wonderful

arts
 around
 the
 world.
 Here
 I
 would
 like
 to
 quote
 the
 words
 of
 Hemingway
 to
 express
 my

affection
 of
 the
 life
 in
 Paris:
 If
 you
 are
 lucky
 enough
 to
 have
 lived
 in
 Paris
 as
 a
 young
 man,

then
 wherever
 you
 go
 for
 the
 rest
 of
 your
 life,
 it
 stays
 with
 you,
 for
 Paris
 is
 a
 moveable

feast.
3

TABLE
 OF
 CONTENTS

Acknowledgements........................................................................................................1

Table
 of
 contents...........................................................................................................3

Abstract.........................................................................................................................5

Résumé..........................................................................................................................6

I.
 Background
 and
 outline
 of
 the
 thesis
  ........................................................................7

1.
 Sarcoptes
 scabiei...........................................................................................................8

1.1.
 Classification...........................................................................................................8

  1.2.
 Morphology............................................................................................................9

1.3.
 Life
 cycle...............................................................................................................11

1.4.
 Survival
 capacities
 and
 modes
 of
 transmission
  ..................................................13

1.5.
 Variability
 and
 host
 specificity .............................................................................14

1.5.1
 Morphological
 variability..............................................................................14

1.5.2.
 Population
 genetics
 of
 Sarcoptes
 scabiei....................................................15

1.5.3.Host
 specificity
 and
 cross-­‐infectivity............................................................23

2.
 Infection
 by
 Sarcoptes
 scabiei
 in
 animals....................................................................26

2.1.
 Distribution..........................................................................................................29

2.2.
 Clinical
 features....................................................................................................30

2.3.
 Diagnosis
 in
 animals.............................................................................................37

2.4.
 Animal
 models......................................................................................................39

3.
 Infection
 by
 Sarcoptes
 scabiei
 in
 humans...................................................................41

4.
 Control.........................................................................................................................47

4.1.
 Acaricides.............................................................................................................47

4.2.
 Current
 treatments
 in
 animals.............................................................................52

4.3.
 Current
 treatments
 in
 humans.............................................................................53

4.4.
 Drug
 resistance
  ...................................................................................................55

5.
 Outline
 of
 the
 thesis....................................................................................................56

II.
 Evaluation
 of
 afoxolaner
 for
 the
 treatment
 of
 Sarcoptes
 scabiei
 infection
 in
 pigs......57

1.
 Introduction................................................................................................................58

2.
 Materials
 and
 Methods...............................................................................................59

2.1.
 Experimental
 pig
 model.......................................................................................59

2.2.
 Study
 design.........................................................................................................60

2.3.
 Clinical
 monitoring...............................................................................................61

2.4.
 Afoxolaner
 and
 ivermectin
 pharmacokinetics......................................................63

2.5.
 Statistical
 Analysis
  ..............................................................................................64
4

3.
 Results
  .......................................................................................................................65

3.1.
 Experimental
 pig
 model.......................................................................................65

3.2.
 Clinical
 outcomes
  ...............................................................................................66

4.
 Discussion
  ..................................................................................................................71

III.
 In
 vitro
 evaluation
 of
 acaricides,
 repellents
 and
 essential
 oils
 for
 the
 control
 of

Sarcoptes
 scabiei................................................................................................................75

1.
 Introduction................................................................................................................76

2.
 Materials
 and
 Methods...............................................................................................78

2.1
 Sarcoptes
 mites.....................................................................................................78

2.2
 Solutions
 preparation
 and
 bioassays
 of
 ivermectin
 and
 moxidectin ....................78

2.3
 Products
 and
 bioassays
 for
 environmental
 control...............................................78

2.4
 Essential
 oils
 and
 bioassays...................................................................................80

2.5
 Statistical
 analyses................................................................................................81

3.
 Results
  .......................................................................................................................81

3.1
 In
 vitro
 evaluation
 of
 ivermectin
 and
 moxidectin
 efficacy..................................81

3.2
 Evaluation
 of
 products
 for
 environmental
 control
 of
 S.
 scabiei..........................82

3.3
 In
 vitro
 evaluation
 of
 essential
 oils......................................................................84

4.
 Discussion
  ..................................................................................................................86

IV.
 Characterization
 of
 the
 genetic
 diversity
 of
 Sarcoptes
 scabiei
 from
 animals.............91

1.
 Introduction................................................................................................................92

2.
 Materials
 and
 Methods...............................................................................................93

2.1
 Collection
 of
 S.
 scabiei
 mites
  ...............................................................................93

2.2
 DNA
 extraction
 and
 gene
 amplification
  ..............................................................96

2.3
 Sequence
 and
 phylogenetic
 analyses
  ..................................................................96

3.
 Results
  .......................................................................................................................97

4.
 Discussion
  ................................................................................................................100

V.
 Conclusion
 and
 perspectives .......................................................................................103

References........................................................................................................................108

Annexes............................................................................................................................124
5

Abstract

Sarcoptes
 scabiei
 is
 an
 ectoparasite
 responsible
 for
 the
 emerging/re-­‐emerging
 disease
 called

scabies
 in
 humans
 or
 mange
 in
 animals.
 It
 was
 reported
 in
 104
 species
 across
 27
 families
 of

domestic
 and
 wild
 animals.
 Current
 treatments
 for
 scabies/mange
 are
 limited
 and
 there
 are
 no

efficient
 products
 for
 the
 environment
 control
 of
 S.
 scabiei.
 Moreover,
 the
 taxonomic
 status
 of
 S.

scabiei
 is
 still
 under
 controversy
 and
 the
 question
 remains
 that
 whether
 it
 represents
 a
 single

species
 or
 several
 taxa.

The
 objectives
 of
 the
 thesis
 were
 to
 assess
 the
 susceptibility
 to
 acaricides
 and
 analyse
 the

genetic
 diversity
 of
 S.
 scabiei
 from
 animals.
 In
 the
 first
 part
 of
 the
 thesis,
 an
 animal
 model
 was

used
 to
 evaluate
 the
 efficacy
 of
 afoxolaner,
 a
 new
 acaricide
 from
 the
 isoaxazoline
 family.
 The

primary
 outcome
 of
 efficacy
 was
 based
 on
 the
 reduction
 in
 the
 number
 of
 live
 mites
 counted
 in

skin
 scrapings
 following
 treatment.
 At
 day
 8,
 four
 afoxolaner-­‐treated
 pigs
 (out
 of
 four)
 were

mite-­‐free,
 while
 mites
 were
 still
 found
 in
 three
 (out
 of
 three)
 ivermectin-­‐treated
 pigs.
 All
 treated

pigs
 were
 cured
 at
 the
 end
 of
 the
 study
 (day
 35)
 and
 all
 pigs
 in
 the
 control
 group
 remained

infected.
 Secondary
 outcomes
 included
 measures
 on
 the
 reduction
 of
 skin
 lesions
 and
 pruritus.

The
 clinical
 lesions
 of
 scabies
 infection
 were
 allowed
 to
 disappear
 completely
 for
 all
 the
 pigs
 in
 the

afoxolaner
 group
 but
 not
 in
 the
 ivermectin
 group
 at
 14
 days
 after
 the
 treatment.
 An
 increase
 of

the
 pruritus
 was
 observed
 right
 after
 treatment,
 followed
 by
 a
 decrease
 of
 the
 pruritus
 score
 in

both
 treated
 groups.
 The
 second
 part
 of
 the
 thesis
 was
 to
 evaluate
 the
 scabicidal
 effect
 of

molecules
 or
 products
 using
 an
 in
 vitro
 test.
 A
 gradient
 of
 concentrations
 of
 ivermectin
 and

moxidectin
 as
 well
 as
 11
 essential
 oils
 have
 been
 evaluated
 in
 vitro
 against
 S.
 scabiei.
 After
 24h
 of

exposure
 to
 ivermectin
 and
 moxidectin,
 the
 median
 lethal
 concentrations
 were
 150.2±31.4
 µg/mL

and
 608.3±88.0
 µg/mL,
 respectively.
 Doses
 of
 ivermectin
 under
 1
 ng/mL
 and
 moxidectin
 under
 10

ng/mL
  showed
  no
  scabicidal
  effect.
  Fumigation
  and
  contact
  bioassays
  were
  used
  for
  the

assessment
  of
  essential
  oils
  efficacy.
  Among
  Lavandula
  augustifolia,
  Melaleuca
  altenifolia,

Pelargonium
 asperum,
 Eucalyptus
 radiate,
 Leptospermum
 scoparium,
 Cryptomeria
 japonica,
 Citrus

aurantium
 ssp
 amara
 and
 3
 other
 unknown
 oils
 (BOB4,
 BOB5,
 BOB9)
 tested
 with
 the
 contact

bioassay,
 the
 essential
 oil
 identified
 as
 BOB4
 demonstrated
 the
 best
 scabicidal
 effect
 (1%
 solution

killed
 all
 the
 mites
 in
 20
 min).
 Among
 the
 10
 essential
 oils
 listed
 before
 plus
 Juniperus
 oxycedrus

with
 the
 fumigation
 bioassay,
 the
 oil
 Melaleuca
 altenifolia
 demonstrated
 the
 best
 scabicidal
 effect

(all
 the
 mites
 died
 in
 only
 4
 min).
 For
 environmental
 control
 of
 S.
 scabiei,
 the
 efficacy
 of
 biocides

or
 repellents
 was
 assessed.
 The
 median
 survival
 time
 was
 calculated
 for
 permethrin
 (4%
 and
 0.6%),

esdepallethrin
  and
  bioresmethrin,
  bifenthrin,
  cypermethrin
  and
  imiprothrin,
  cyfluthrin,

tetramethrin
 and
 sumithrin,
 DEET
 (25%
 and
 50%),
 icaridin
 and
 IR3535.
 The
 third
 part
 of
 the
 thesis

included
 the
 study
 of
 the
 genetic
 diversity
 of
 populations
 of
 S.
 scabiei
 from
 animals.
 A
 part
 of
 cox1

was
 used
 for
 phylogenetic
 analyses.
 The
 results
 showed
 that
 Sarcoptes
 mites
 from
 dogs
 seem
 to

derive
 from
 humans.

Key
 words:
 Sarcoptes
 scabiei,
 acaricides,
 animal
 model,
 in
 vitro
 test,
 genetic
 diversity.
6

Résumé

Sarcoptes
 scabiei
 est
 un
 acarien
 ectoparasite
 obligatoire.
 Sa
 présence
 dans
 la
 couche
 cornée

de
 l’épiderme
 est
 à
 l’origine
 d’une
 gale
 dite
 sarcoptique.
 Cette
 ectoparasitose
 a
 été
 décrite
 chez

104
 espèces
 de
 mammifères
 représentant
 27
 familles
 distinctes.
 Les
 traitements
 actuels
 de
 la
 gale

sarcoptique
  ne
  sont
  pas
  toujours
  satisfaisants
  et
  il
  n’existe
  pas
  de
  produits
  qui
  permettent

d’éliminer
 S.
 scabiei
 dans
 l’environnement.
 Par
 ailleurs,
 la
 diversité
 génétique
 de
 S.
 scabiei
 n’est

pas
 clairement
 définie
 et
 l’unicité
 de
 l’espèce
 fait
 toujours
 l’objet
 de
 controverses.

L’objectif
 de
 cette
 thèse
 a
 été
 d’évaluer
 l’efficacité
 d’acaricides
 vis-­‐à-­‐vis
 de
 S.
 scabiei
 en

utilisant
 un
 modèle
 animal
 ou
 par
 le
 biais
 de
 tests
 in
 vitro.
 La
 diversité
 génétique
 d’isolats
 d’origine

animale
 a
 également
 été
 étudiée.
 La
 première
 partie
 du
 travail
 de
 thèse
 a
 concerné
 un
 essai

thérapeutique

  L’efficacité
  d’une
  administration
  orale
  unique
  d’afoxolaner,
  une
  molécule
  du

groupe
 des
 isoaxazolines,
 a
 été
 évaluée
 sur
 des
 porcs
 expérimentalement
 infestés.
 Le
 critère

principal
 d’évaluation
 a
 été
 la
 réduction
 du
 nombre
 de
 sarcoptes
 mis
 en
 évidence
 dans
 les
 raclages

cutanés.
 Huit
 jours
 après
 le
 traitement,
 aucun
 sarcopte
 n’a
 été
 détecté
 sur
 les
 4
 porcs
 ayant
 reçu

l’afoxolaner
 alors
 que
 des
 sarcoptes
 étaient
 toujours
 présents
 sur
 les
 3
 porcs
 ayant
 reçu
 de

l’ivermectine.
 Tous
 les
 porcs
 traités
 étaient
 guéris
 à
 la
 fin
 de
 l’essai
 (J35)
 alors
 que
 les
 animaux
 non

traités
  sont
  demeurés
  infestés.
  Les
  autres
  critères
  d’évaluation
  étaient
  l’évolution
  du
  score

clinique
 et
 de
 prurit.
 Les
 lésions
 cutanées
 ont
 rapidement
 régressé
 dans
 le
 groupe
 traité
 par

l’afoxolaner
 alors
 qu’elles
 étaient
 encore
 présentes
 à
 J14
 dans
 le
 groupe
 traité
 avec
 l’ivermectine.

La
 deuxième
 partie
 du
 travail
 de
 thèse
 a
 porté
 sur
 l’évaluation
 in
 vitro
 de
 différentes
 molécules
 ou

produits
 acaricides.
 Plusieurs
 concentrations
 d’une
 solution
 d’ivermectin
 ou
 de
 moxidectine
 ainsi

11
 huiles
 essentielles
 ont
 été
 testées.
 Après
 24h
 de
 contact
 avec
 l’ivermectine
 et
 la
 moxidectine,
 la

dose
  létale
  50%
  étaient
  de
  150,2±31,4
  µg/mL
  et
  608,3±88,0
  µg/mL,
  respectivement.
  Une

concentration
 inférieure
 à
 1
 ng/mL
 (pour
 l’ivermectine)
 ou
 à
 10
 ng/mL
 (pour
 la
 moxidectine)
 n’a

aucune
 activité
 acaricide.
 Pour
 les
 huiles
 essentielles,
 des
 tests
 par
 fumigation
 et
 par
 immersion

ont
  été
  réalisés.
  Parmi
  Lavandula
  augustifolia,
  Melaleuca
  altenifolia,
  Pelargonium
  asperum,

Eucalyptus
 radiate,
 Leptospermum
 scoparium,
 Cryptomeria
 japonica,
 Citrus
 aurantium
 ssp
 amara

et
 3
 l’huile
 essentielle
 identifiée
 (BOB4,
 BOB5,
 BOB9)
 testés
 par
 immersion,
 l’huile
 essentielle

identifiée
 BOB4
 s’est
 révélée
 la
 plus
 efficace
 (une
 solution
 à
 1%
 tue
 tous
 les
 acariens
 en
 20
 min).

Parmi
 les
 10
 huiles
 essentielles
 énumérées
 avant,
 plus
 Juniperus
 oxycedrus
 testés
 par
 immersion,

l’huile
 essentielle
 de
 Melaleuca
 altenifolia
 s’est
 révélée
 la
 plus
 efficace
 (tous
 les
 acariens
 sont

morts
 en
 4
 min).
 Pour
 le
 contrôle
 de
 S.
 scabiei
 dans
 l’environnement,
 différents
 biocides
 ou

répulsifs
  ont
  été
  examinés.
  La
  durée
  moyenne
  de
  survie
  a
  été
  calculée
  pour
  les
  produits

comportant
 de
 la
 perméthrine,
 de
 l’esdépallethrine
 et
 de
 la
 bioresmethrine,
 de
 la
 bifenthrine,
 de

la
 cyperméthrine
 et
 de
 l’imiprothrine,
 de
 la
 cyfluthrine,
 de
 la
 tétramethrine
 et
 de
 la
 sumithrine,
 du

DEET,
 de
 l’icaridine
 et
 le
 produit
 IR3535.
 La
 deuxième
 partie
 du
 travail
 de
 thèse
 a
 porté
 sur
 la

diversité
 génétique
 d’isolats
 de
 S.
 scabiei
 provenant
 d’animaux.
 Une
 partie
 du
 gène
 cox1
 a
 été

amplifiée.
 L’analyse
 des
 séquences
 ainsi
 obtenues
 semble
 montrer
 que
 les
 sarcoptes
 circulant

chez
 le
 Chien
 sont
 issus
 de
 population
 de
 sarcoptes
 d’origine
 humaine.

Mots
 clés
 :
 Sarcoptes
 scabiei,
 acaricides,
 modèle
 animal,
 tests
 in
 vitro,
 diversité
 génétique.
I.
 Background
  7

I.
 Background
 and
 outline
 of
 the
 thesis
I.
 Background
  8

1.
 Sarcoptes
 scabiei

1.1 Classification

  Sarcoptes
  scabiei
  is
  an
  arthropod,
  subphylum
  Chelicerata,
  class
  Arachnida,
  order

Acarina,
 suborder
 Astigmata
 (Sarcoptiformes)
 and
 family
 Sarcoptidae
 (figure
 1).

  The
 word
 arthropod
 comes
 from
 the
 Greek
 words
 arthro
 that
 means
 joint
 and
 podos

that
 means
 foot.
 Arthropods
 are
 characterized
 by
 their
 jointed
 limbs
 and
 cuticle
 made
 of

chitin,
 often
 mineralized
 with
 calcium
 carbonate.
 The
 Phylum
 Arthropoda
 includes
 the

insects,
 myriapods,
 crustaceans,
 chelicerates
 and
 trilobites.
 There
 are
 around
 1.3
 million

different
 kinds
 arthropods
 that
 have
 been
 found,
 which
 is
 the
 most
 numerous
 phylum
 of

all
 living
 organisms
 (Averof
 and
 Akam,
 1995;
 Mangowi,
 2014).
 Arachnida
 are
 a
 class
 of

arthropods
 with
 8
 legs.
 The
 order
 Acarina
 (or
 Acari),
 including
 mites
 and
 ticks,
 contains

numerous
 economically
 and
 medically
 important
 species
 that
 are
 parasitic
 for
 humans,

domestic
 or
 wild
 animals,
 and
 crops,
 food,
 etc.
 The
 sub-­‐order
 Astigmata
 is
 a
 large
 group

of
  relatively
  slow
  moving,
  similar
  mites
  with
  thinly
  sclerotized
  integument
  and
  no

detectable
  spiracles
  or
  tracheal
  system.
  The
  families
  Sarcoptidae,
  Psoroptidae
  and

Cnemidocoptidae
 are
 of
 major
 veterinary
 importance.
 Sarcoptidae
 are
 characterized
 by

short
  legs
  and
  short
  capitulum.
  Psoroptidae
  are
  characterized
  by
  long
  legs
  and
  long

capitulum;
  the
  size
  of
  these
  parasites
  is
  relatively
  bigger
  than
  that
  of
  Sarcoptidae.

Cnemidocoptidae
 (or
 Knemidocoptidae)
 are
 parasites
 of
 birds.
 The
 family
 Sarcoptidae

includes
 three
 genera:
 Sarcoptes,
 Notoedres
 and
 Trixacarus.
 All
 of
 them
 are
 parasites
 in

mammals
 (Mehlhorn
 and
 Armstrong,
 2001;
 Taylor
 et
 al.,
 2007).
I.
 Background
  9

Figure
 1.
 Simplified
 classification
 of
 mites
 of
 veterinary
 importance

1.2
 Morphology

  Sarcoptes
 scabiei
 has
 a
 characteristic
 oval,
 ventrally
 flattened
 and
 dorsally
 convex,

tortoise-­‐like
 body.
 The
 most
 striking
 parts
 of
 the
 ventral
 surface
 are
 the
 chitinous
 bars

(called
 epimeres),
 which
 strengthen
 the
 places
 where
 forelegs
 and
 hindlegs
 are
 inserted
 in

the
 body.
 On
 the
 dorsal
 surface
 of
 the
 mite,
 there
 are
 transversely
 arranged
 thorns
 and
 10

pairs
 of
 spines
 arranged
 on
 two
 sides,
 3
 pairs
 on
 the
 anterior
 part
 and
 7
 pairs
 on
 the

posterior
 part
 of
 the
 dorsal
 surface.
 The
 female
 is
 300
 to
 500
 µm
 long
 by
 230-­‐420
 µm

wide,
 and
 the
 male
 is
 210
 to
 285
 µm
 long
 by
 160-­‐210
 µm
 wide,
 around
 two-­‐thirds
 the
 size

of
 the
 female.
 Larvae
 have
 six
 legs,
 nymphs
 and
 adults
 have
 eight
 legs,
 with
 suckers

present
 on
 legs
 1
 and
 2
 in
 both
 sexes
 and
 leg
 4
 only
 in
 male
 (figures
 2
 &
 3).
 The
 anus
 is

terminal
 in
 both
 sexes.
 The
 eggs
 are
 oval,
 whitish
 and
 glossy,
 with
 slightly
 tapering
 at
 the

pole
 lying
 anteriorly
 in
 the
 female
 mite,
 and
 this
 pole
 is
 attached
 to
 the
 floor
 of
 the

burrow
 by
 means
 of
 sticky
 substance,
 which
 may
 fasten
 the
 egg
 to
 the
 burrow
 securely.

The
  dimensions
  of
  the
  eggs
  are
  167-­‐175
 µm
  by
  88-­‐97
 µm,
  and
  increase
  during

development
 (figure
 4)
 (Heilesen,
 1946).