ISSR and SRAP Markers Reveal Genetic Diversity and Population Structure of an Endangered Slipper Orchid, Paphiopedilum micranthum (Orchidaceae) PDF
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植 物 分 类 与 资 源 学 报 ꎬ３６ ( ): ２０１４ ２ ２０９~２１８ Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ : ＤＯＩ １０.７６７７/ｙｎｚｗｙｊ２０１４１３０８５ 珍稀濒危植物硬叶兜兰的遗传多样性及遗传结构研究 ∗ 黄家林１ꎬ２ꎬ 李树云１ꎬ 胡 虹１∗∗ 中国科学院昆明植物研究所 云南昆明 中国科学院大学 北京 (１ ꎬ ６５０２０１ꎻ２ ꎬ １０００４９) 摘要: 由于人为采集 走私贩卖以及生境的破坏 分布于中国西南石灰岩地区的野生硬叶兜兰居群受到严 、 ꎬ 重的干扰与威胁 为有效地保护这种珍稀野生植物 本研究采用 和 两种分子标记对 个硬叶 ꎮ ꎬ ＩＳＳＲ ＳＲＡＰ １５ 兜兰野生居群进行遗传多样性及遗传结构的研究 结果表明 硬叶兜兰在物种水平上具有较高的遗传多样 ꎮ ꎬ 性 Ｈ Ｈ 硬叶兜兰居群间存在一定程 (ＩＳＳＲ: ＰＰＢ＝９１６６％ꎬ ｅ＝０３８３９ꎻ ＳＲＡＰ: ＰＰＢ＝９９２９％ꎬ ｅ＝０２８０６)ꎮ 度的遗传分化 Ｇ Ｇ 可能由于较低的基因流 Ｎｍ (ＩＳＳＲ: ｓｔ＝０２５７７ꎻ ＳＲＡＰ: ｓｔ＝０２３８３)ꎬ (ＩＳＳＲ: ＝０７２０１ꎻ Ｎｍ 所致 聚类分析以及主成分分析均把 个居群分成 个主要分支 居群间 ＳＲＡＰ: ＝０７９９１) ꎮ ＵＰＧＭＡ １５ ２ ꎮ 的地理距离和海拔差距是引起居群遗传分化的自然因素 ꎮ 关键词: 资源保护 分子标记 遗传多样性 遗传分化 硬叶兜兰 ꎻ ꎻ ꎻ ꎻ 中图分类号: 文献标识码: 文章编号: Ｑ１６ Ａ ２０９５－０８４５(２０１４)０２－２０９－１０ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａｎ Ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ Ｓｌｉｐｐｅｒ Ｏｒｃｈｉｄ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ꎬ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ ( ) １ꎬ２ １ １∗∗ ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ ꎬ ＬＩ Ｓｈｕ￣Ｙｕｎ ꎬ ＨＵ Ｈｏｎｇ ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＥｃｏｎｏｍｉｃＰｌａｎｔｓａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ＫｕｎｍｉｎｇＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＢｏｔａｎｙ ＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ (１ ꎬ ꎬ ꎬ ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ Ｋｕｎｍｉｎｇ６５０２０１ꎬＣｈｉｎａꎻ２ ꎬＢｅｉｊｉｎｇ１０００４９ꎬＣｈｉｎａ) Ａｂｓｔｒａｃｔ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ : ｉｓａｎｅｎｄａｎｇｅｒｅｄｐｉｎｋｓｌｉｐｐｅｒｏｒｃｈｉｄｍａｉｎｌｙｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄｉｎｔｈｅｌｉｍｅｓｔｏｎｅａｒｅａｓ ｏｆ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｗｉｌｄｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓｏｆｔｈｉｓｓｐｅｃｉｅｓｈａｖｅｂｅｅｎｓｅｒｉｏｕｓｌｙｔｈｒｅａｔｅｎｅｄｂｙｅｘｃｅｓｓｉｖｅｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎｓꎬｒａｍ￣ ｐａｎｔ ｓｍｕｇｇｌｉｎｇ ｆｏｒ ｅｘｐｏｒｔꎬ ａｎｄ ｈａｂｉｔａｔ ｄｅｓｔｒｕｃｔｉｏｎ. Ｗｅ ｕｓｅｄ １５ ＩＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ ａｎｄ １１ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ１５ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ａ ｈｉｇｈ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗａｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ Ｈ Ｈ ｌｅｖｅｌ (ＩＳＳＲ:ＰＰＢ＝９１６６％ꎬ ｅ＝０３８３９ꎻＳＲＡＰ:ＰＰＢ＝９９２９％ꎬ ｅ＝０２８０６). Ｃｅｒｔａｉｎｄｅｇｒｅｅｏｆｇｅｎｅｔｉｃｄｉｆｆｅｒ￣ Ｇ Ｇ ｅｎｔｉａｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (ＩＳＳＲ: ｓｔ＝０２５７７ꎻ ＳＲＡＰ: ｓｔ＝０２３８３) ｗａｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｍａｙｂｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｌｏｗ ｇｅｎｅ Ｎｍ Ｎｍ ｆｌｏｗ(ＩＳＳＲ: ＝０７２０１ꎻＳＲＡＰ: ＝０７９９１). ＣｏｎｓｉｓｔｅｎｔｗｉｔｈｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓｏｆＰｒｉｎｃｉｐａｌＣｏｏｒｄｉｎａｔｅＡｎａｌｙｓｉｓꎬｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ｄｅｎｄｒｏｇｒａｍ ａｎａｌｙｓｉｓ ｄｉｖｉｄｅｄ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｍａｉｎ ｃｌａｄｅｓ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｔｏ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅꎬ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｉｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ ｗａｓ ａｎｏｔｈｅｒ ｎａｔｕｒａｌ ｆａｃｔｏｒ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｎｇ ｔｏ ｔｈｉｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ. Ｋｎｏｗｌｅｄｇｅ ａｂｏｕｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉ￣ ｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｓｔｒｕｃｔｕｒｅｇａｉｎｅｄｆｒｏｍｏｕｒｓｔｕｄｙｗｉｌｌｂｅｂｅｎｅｆｉｃｉａｌｆｏｒｔｈｅｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｒｅａｓｏｎａｂｌｅａｎｄｅｆｆｉｃｉｅｎｔｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｔｏ ｃｏｎｓｅｒｖｅ ｔｈｉｓ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ : Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎꎻ ＤＮＡ ｍａｒｋｅｒｓꎻ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎻ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎꎻ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐｆｉｔｚ.ꎬ ａ ｐｒｉｍｉｔｉｖｅ ｇｒｏｕｐ ｗｉｔｈｉｎ Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅꎬ ｉｓ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｆｒｏｍ ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｃｈｉｎａ ∗Ｆｕｎｄｉｎｇ:ＴｈｅＢａｓｉｃＲｅｓｅａｒｃｈＰｒｏｇｒａｍｏｆＹｕｎｎａｎＰｒｏｖｉｎｃｅ(２００７Ｃ００１Ｚ) ａｎｄｔｈｅＬａｒｇｅ￣ＳｃａｌｅＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＦａｃｉｌｉｔｉｅｓｏｆｔｈｅＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙ ｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ(２００９￣ＬＳＦ￣ＧＢＯＷＳ￣０１) ∗∗ＡｕｔｈｏｒｆｏｒｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻＥ￣ｍａｉｌ:ｈｕｈｏｎｇ＠ｍａｉｌｋｉｂａｃｃｎ Ｒｅｃｅｉｖｅｄｄａｔｅ: ２０１３－０４－１１ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄｄａｔｅ: ２０１３－０９－０４ 作者简介 黄家林 男 助理研究员 主要从事兰科植物的资源保护与开发利用 : (１９７４－) ꎬ ꎬ ꎮ Ｅ￣ｍａｉｌ:ｈｕａｎｇｊｉａｌｉｎ＠ｍａｉｌｋｉｂａｃｃｎ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷 ２１０ ３６ ａｌ ｅｔ ａｌ ｔｏ Ｎｅｗ Ｇｕｉｎｅａ ｉｎ ｔｒｏｐｉｃａｌ ａｎｄ ｓｕｂｔｒｏｐｉｃａｌ Ａｓｉａ (Ｌｉｕ .ꎬ ２００７)ꎬ ａｎｄ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ (Ｃｈｅｎ .ꎬ ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ .ꎬ ２００９). Ｔｈｅｓｅ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄｓ ａｒｅ ｎａｍｅｄ ｆｏｒ ２００４ꎻ Ｌｉａｏ .ꎬ ２０１１ꎻ Ｃｈｕｎｇ ａｎｄ Ｃｈｏｉꎬ ２０１２). ｔｈｅ ｓｈａｐｅ ｏｆ ｔｈｅ ｄｅｅｐｌｙ ｓａｃｃａｔｅ ｌｉｐ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｆｌｏｗｅｒｓ. Ｃｌａｒｉｆｙｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｒｏｗｅｒｓ ｐｒｉｚｅ ｔｈｅｍ ｆｏｒ ｔｈｅｉｒ ｖｅｒｙ ｇｒｅａｔ ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｅｘｔａｎｔ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｎｏｔ ｏｎｌｙ ｐｒｏｖｉｄｅｓ ｉｎ￣ ｖａｌｕｅꎬ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｓｅ ｓｍａｌｌ ｐｌａｎｔｓ ｈａｖｅ ｓｉｇｈｔｓ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ａｎｄ ｄｅｍｏｇｒａｐｈｉｃ ｈｉｓｔｏｒｙ ｅｔ ａｌ ｓｐｅｃｔａｃｕｌａｒꎬ ｌａｒｇｅ ｆｌｏｗｅｒｓ (Ｃｒｉｂｂꎬ １９９８). Ｍｏｒｅ ｏｆ ｔｈｒｅａｔｅｎｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｈａｍｒｉｃｋ .ꎬ １９８２ꎻ Ｈａｍ￣ ｔｈａｎ ２０ ０００ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄ ｈｙｂｒｉｄ ｇｒｅｘｅｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｒｉｃｋ ａｎｄ Ｇｏｄｔꎬ１９９０)ꎬ ｂｕｔ ａｌｓｏ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅｓ ｔｈｅ ｄｅｓｉｇｎ ｒｅｇｉｓｔｅｒｅｄꎬ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｉｎｇ ｔｈｅｉｒ ｒｅｍａｒｋａｂｌｅ ｒｉｓｅ ｉｎ ｏｆ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ａｎｄ ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｅｔ ａｌ. ｅｔ ａｌ ｐｏｐｕｌａｒｉｔｙ (Ｚｅｎｇ ꎬ ２０１０). Ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｉｎ ｓｏｕｔｈ￣ (Ｊｉａｎ .ꎬ ２００６). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｎｌｙ ａ ｆｅｗ ｓｔｕｄｉｅｓ ｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｓｏｕｔｈｅａｓｔｅｒｎ Ｙｕｎｎａｎꎬ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔｙ ａｓｓｏｃｉ￣ ｎｏｒｔｈｅｒｎ ａｎｄ ｗｅｓｔｅｒｎ Ｇｕａｎｇｘｉꎬ ａｎｄ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ ａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｓａｍｐｌｅｓ ｆｏｒ ｓｌｉｐｐｅｒ Ｇｕｉｚｈｏｕꎬ ａｒｅ ｋｎｏｗｎ ａｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｏｒｃｈｉｄｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｏｎｅ ｔｈａｔ ｕｓｅｄ ｒａｎｄｏｍ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｅｔ ａｌ ｅｔ ｈｏｔｓｐｏｔｓ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ｇｅｎｕｓ (Ｌｕｏ .ꎬ ２００３ꎻ Ｌｉｕ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ＤＮＡ (ＲＡＰＤ) ｍａｒｋｅｒｓ ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｔｈｅ ａｌ .ꎬ ２０１０). Ｔｈｅｒｅ ａｒｅ ２５ ｏｆ ８０ ｓｐｅｃｉｅｓ ｇｒｏｗ ｏｎ ｌｉｍｅ￣ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｉｔｈｉｎ ｆｏｕｒ ｎａｔｕｒａｌｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｅｔ ａｌ ｓｔｏｎｅ ｈｉｌｌｓ ｉｎ ｔｈａｔ ｒｅｇｉｏｎ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｔｏ ｔｈｒｅａｔｓ ｆｒｏｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (Ｌｉ .ꎬ ２００２ｂ). ｒａｐｉｄ ｈａｂｉｔａｔ ｄｅｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｆａｓｔｅｒ ｅｃｏ￣ Ｉｎｔｅｒ￣ｓｉｍｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｒｅｐｅａｔｓ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ｓｅ￣ ｎｏｍｉｃ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｒｕｒａｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｐａｓｔ ｑｕｅｎｃｅ￣ｒｅｌａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ (ＳＲＡＰ) ａｒｅ ｔｈｒｅｅ ｄｅｃａｄｅｓꎬ ｗｉｌｄ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄｓ ａｒｅ ｆａｃｉｎｇ ｄｅ￣ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｓｉｍｐｌｅ ａｎｄ ｈｉｇｈｌｙ ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅ ｍａｒｋｅｒ ｓｔｒｕｃｔｉｖｅ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇ ｐｒｅｓｓｕｒｅｓｄｕｅ ｔｏ ｌａｒｇｅ ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ｔｈａｔ ｄｏ ｎｏｔ ｒｅｌｙ ｏｎ ｐｒｉｏｒ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａ￣ ｅｔ ａｌ ａｎｄ ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ ｄｅｍａｎｄｓｉｎ Ｃｈｉｎａ (Ｌｕｏ .ꎬ２００３ꎻ ｂｏｕｔ ａ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅꎬ ａｎｄ ｗｈｉｃｈ ｒｅｑｕｉｒｅ ｖｅｒｙ ｌｉｔｔｌｅ ｅｔ ａｌ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉ￣ ｅｔ ａｌ Ｌｉｕ .ꎬ ２００９). Ｔｈｉｓ ｖｕｌｎｅｒａｂｉｌｉｔｙ ｂｙ ｓｔａｒｔｉｎｇ ＤＮＡ ｔｅｍｐｌａｔｅ (Ｚｉｅｔｋｉｅｗｉｃｚ .ꎬ １９９４ꎻ Ｌｉ ｌｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｏ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｃｈａｎｇｅ ｃａｎ ｂｅ ａｌｓｏ ａｎｄ Ｑｕｉｒｏｓꎬ ２００１). Ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ｓｙｓｔｅｍｓ ｈａｖｅ ｐｒｏｖｅｎ ｔｒａｃｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｌｉｍｉｔｅｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｎｙ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｔｏ ｂｅ ｐｏｗｅｒｆｕｌ ａｎｄ ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｆｏｒ ａｎａｌｙｓｅｓ ｔｈｅ ｗｉｌｄ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓｔｈａｔ ｏｆｔｅｎ ｏｆ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｃｏｎｔａｉｎ ｏｎｌｙ ａ ｆｅｗ ｐｌａｎｔｓ ｅａｃｈ (Ｃｒｉｂｂ ａｎｄ ＭｃＧｏｕｇｈꎬ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｍａｒｋｅｒ￣ａｓｓｉｓｔｅｄ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｉｎ ｍａｎｙ ｅｔ ａｌ １９９７). Ｉｔ ｉｓ ｕｒｇｅｎｔ ｔｏ ｔａｋｅ ｐｒｏｐｅｒ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｔｏ ｃｏｎ￣ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｓｍｉｔｈ .ꎬ２００２ꎻ Ｗａｌｌａｃｅꎬ２００３ꎻ ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ ｅｔ ｓｅｒｖｅ ｔｈｅｓｅ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ｄｉｎｇ .ꎬ ２００８ꎻ Ｇｅｏｒｇｅ .ꎬ ２００９ꎻ Ｗａｎｇ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｌ ｅｔ ａｌ ｉｓ ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ .ꎬ ２００９ꎻ Ｃａｉ .ꎬ ２０１１). Ｗｅ ｔｈｕｓ ａｐｐｌｙ ｔｈｅｓｅ ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｈｉｌｌｓ ｏｆ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｉｎ ｔｈｅ ｅａｒｌｙ ｔｗｏ ｍａｒｋｅｒｓ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ １９８０ｓꎬ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ ｅｘｐｏｒｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｃｈｉｎａ ａｎｄ ｄｅｓｅｒｖ￣ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ￣ ｅｄｌｙ ｒｅｃｅｉｖｅｄ Ｆｉｒｓｔ Ｃｌａｓｓ Ｃｅｒｔｉｆｉｃａｔｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉ￣ ｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｏｕｒ ｍａｉｎ ｇｏａｌｓ ｗｅｒｅ ｔｏ １) ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｃａｎ Ｏｒｃｈｉｄ Ｓｏｃｉｅｔｙꎬ ｔｈｅ Ｒｏｙａｌ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙꎬ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａ￣ ａｎｄ ｍａｎｙ ｏｔｈｅｒ ａｗａｒｄｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｓｅ ｂｅａｕ￣ ｔｉｏｎｓꎬ ２) ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅ ｔｈｅ ｅｘｔｅｎｔ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎ￣ ｔｉｆｕｌ ｐｌａｎｔｓ ｈａｖｅ ｐｉｎｋ ｆｌｏｗｅｒｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｌａｒｇｅｒ ｔｈａｎ ｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ａｎｄ ３) ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｔｈｅ ｔｈｏｓｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｋｎｏｗｎ (Ｃｒｉｂｂꎬ １９９８). Ｓｉｎｃｅ ｔｈｅｎꎬ ｃａｕｓｅｓ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ. ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｉｎ ｌａｒｇｅ ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｅｔ １ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ ｗｈｉｌｅ ｗｉｌｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｈａｖｅ ｄｅｃｌｉｎｅｄ ｓｈａｒｐｌｙ (Ｌｉ ａｌ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ １１ Ｓａｍｐｌｉｎｇ ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ .ꎬ ２００２ｂ). Ｔｏ ｐｒｅｓｅｒｖｅ ａｎｄ ｅｘｐｌｏｉｔ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ａｎｄ ｉｔｓ ａｌｌｉｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ Ｗｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ４０７ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｅｆ￣ ｆｒｏｍ １５ ｗｉｌｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｔｈｒｅｅ ｐｒｏｖ￣ ｅｔ ａｌ ｆｏｒｔｓ (Ｌｉｕ .ꎬ ２００４ꎻ ２００６)ꎬ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｅｃｏｌｏ￣ ｉｎｃｅｓ ｏｆ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ (Ｆｉｇ１ꎻ Ｔａｂｌｅ １). Ｂｅ￣ ｅｔ ａｌ ｅｔ ｇｙ (Ｃｈａｎｇ .ꎬ２０１１)ꎬ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｂｉｏｌｏｇｙ (Ｓｈｉ ｃａｕｓｅ ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｓ ｒｈｉｚｏｍａｔｏｕｓ ａｎｄ ｆｏｒｍｓ ｃｌｕｍｐｓ 期 ｅｔ ａｌ ２ ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ .: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ２ １１ ｅｔ ａｌ ｏｆ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｐｌａｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｗｉｌｄ (Ｔｓｉ .ꎬ１９９９)ꎬ ｗｅ ＳＲ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｉｘｔｕｒｅ (２０ μＬ) ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ５０ ｎｇ ｏｆ ｔｒｉｅｄ ｔｏ ａｖｏｉｄ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇ ｒａｍｅｔｓ ｏｆ ｏｎｌｙ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｇｅｎｏ￣ ｔｅｍｐｌａｔｅ ＤＮＡꎬ ８ μＬ ｏｆ ２×Ｔａｑ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ －１ ｔｙｐｅ ｂｙ ｒａｎｄｏｍｌｙ ｓｅｌｅｃｔｉｎｇ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｔｈａｔ ｗｅｒｅ (０１ Ｕ ｏｆ Ｔａｑ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｐｅｒ μＬꎬ ０５ ｍｍｏｌＬ －１ －１ ｓｐａｃｅｄ ａｔ ｌｅａｓｔ３ ｍ ａｐａｒｔ. Ｙｏｕｎｇ ｌｅａｖｅｓ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓ￣ ｄＮＴＰꎬ ２０ｍｍｏｌＬ Ｔｒｉｓ￣ＨＣｌꎬ １００ ｍｍｏｌＬ ＫＣｌꎬ －１ ｔｅｄ ａｎｄ ｄｒｉｅｄ ｂｙ ｓｉｌｉｃａ ｇｅｌ ｆｏｒ ｆｕｒｔｈｅｒ ＤＮＡ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ. ａｎｄ ３ｍｍｏｌＬ ＭｇＣｌ２)ꎬ ｐｌｕｓ ２％ ｆｏｒｍａｍｉｄｅꎬ １００ －１ Ｔｈｅ ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ ｏｆ ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｅ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｎｍｏｌＬ ｐｒｉｍｅｒꎬ ａｎｄ ｄｏｕｂｌｅ￣ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ. Ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｂｙ ｔｈｅ ｓｔａｎｄａｒｄ ＣＴＡＢ (ｃｅｔｙｌｔｒｉｍｅｔｈｙｌ ａｍｍｏ￣ ＰＣＲ ｐｒｏｇｒａｍ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ａｎ ｉｎｉｔｉａｌ ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｔ ９４℃ ｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ) ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ Ｄｏｙｌｅ ａｎｄ Ｄｏｙｌｅ (１９８７). ｆｏｒ ５ｍｉｎꎻ ｔｈｅｎ４０ ｃｙｃｌｅｓ ｏｆ９４℃ ｆｏｒ４５ｓꎬ５３℃ ｆｏｒ １ｍｉｎꎬ ａｎｄ ７２℃ ｆｏｒ ２ ｍｉｎꎻ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ａ ｆｉｎａｌ ｅｘ￣ ｔｅｎｓｉｏｎ ａｔ ７２ ℃ ｆｏｒ ７ ｍｉｎ. Ｔｈｅ ＩＳＳＲ￣ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｉｎ ２０％ ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌｓ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｗｉｔｈ ０５×ＴＢＥ. Ａ １００ｂｐ ＤＮＡ ｌａｄｄｅｒ (Ｆｅｒｍｅｎｔａｓ) ｗａｓ ｕｓｅｄ ａｓ ａ ｓｉｚｅ ｍａｒｋｅｒ. Ａｆｔｅｒ ｓｔａｉｎｉｎｇ ｗｉｔｈ ｅｔｈｉｄｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅꎬｔｈｅ ＤＮＡｆｒａｇｍｅｎｔｓｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ ｉｍａｇｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｓｏｆｔｗａｒｅ ｆｏｒ ｇｅｌ ｄｏｃｕｍｅｎｔａｔｉｏｎ (Ｌａｂ Ｗｏｒｋｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅꎬ ｖｅｒｓｉｏｎ ３０ꎻ ＵＶＰꎬ Ｕｐｌａｎｄꎬ ＣＡꎬ ＵＳＡ). １３ ＳＲＡＰ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ Ｔｈｅ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｄｅ￣ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｆｉｇ１ Ｓａｍｐｌｉｎｇｓｉｔｅｓｆｏｒｗｉｌｄｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓｏｆ ｓｃｒｉｂｅｄ ｂｙ Ｌｉ ａｎｄ Ｑｕｉｒｏｓ (２００１). Ｆｒｏｍ ８８ ａｒｂｉｔｒａｒｙ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｉｎｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎＣｈｉｎａ. Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｐｒｉｍｅｒ ｐａｉｒｓꎬ ｗｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ １１ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｓｈｏｗｅｄ ｃｏｄｅｓａｒｅｅｘｐｌａｉｎｅｄｗｉｔｈＴａｂｌｅ１ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ(Ｔａｂｌｅ２).Ｅａｃｈ ＳＲＡＰ ｒｅａｃｔｉｏｎ １２ ＩＳＳＲ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ ｍｉｘｔｕｒｅ (２０μＬ) ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ４０ｎｇ ｏｆ ｔｅｍｐｌａｔｅ ＤＮＡꎬ －１ Ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｆｏｒ ｏｕｒ ＩＳＳＲ ｐｒｉｍｅｒｓ ｗｅｒｅ ｐｒｏ￣ ８μＬ ｏｆ ２ × Ｔａｑ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘꎬ １００ ｎｍｏｌＬ ｖｉｄｅｄ ｂｙ ｔｈｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙꎬ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｅａｃｈ ｆｏｒ ｆｏｒｗａｒｄ ａｎｄ ｒｅｖｅｒｓｅ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ａｎｄ ｄｏｕｂｌｅ￣ Ｂｒｉｔｉｓｈ Ｃｏｌｕｍｂｉａꎬ Ｃａｎａｄａ. Ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ １５ (Ｔａｂｌｅ ２) ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ. Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅ ｆｒｏｍ ９０ ａｒｂｉｔｒａｒｙ ｐｒｉｍｅｒｓ ｓｈｏｗｉｎｇ ｇｏｏｄ ｒｅｐｅｔｉｔｉｏｎꎬ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ:９４℃/３ｍｉｎꎻｆｉｖｅ ｃｙｃｌｅｓ ｏｆ ９４℃ ｓｐｅｃｉａｌ ｂａｎｄｓꎬ ａｎｄ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ. Ｅａｃｈ ＩＳ￣ /１ｍｉｎꎬ ３５℃/１ｍｉｎꎬ ７２℃/１ｍｉｎꎻ ｔｈｅｎ ３０ ｃｙｃｌｅｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｔａｂｌｅ１ Ｓａｍｐｌｉｎｇｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｆｏｒ１５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｃｏｄｅ Ｌｏｃａｔｉｏｎ Ｎｕｍｂｅｒｏｆｓａｍｐｌｅｓ Ｅｌｅｖａｔｉｏｎ/ｍ Ｌｏｎｇｉｔｕｄｅ(Ｅ) Ｌａｔｉｔｕｄｅ(Ｎ) ＹＷ ＷｅｎｓｈａｎꎬＹｕｎｎａｎ ３６ １５５０ １０４°１８′４２″ ２３°１０′２２″ ＹＧ ＧｕａｎｇｎａｎꎬＹｕｎｎａｎ ３６ １５３０ １０５°０４′１５″ ２４°１１′３１″ ＹＴ ＴｉａｎｂａｏꎬＹｕｎｎａｎ ２４ １３５０ １０４°４４′２６″ ２３°０３′４１″ ＹＸ ＸｉｃｈｏｕꎬＹｕｎｎａｎ ２７ １５４０ １０４°３１′５１″ ２３°２０′１３″ ＹＦ ＦａｄｏｕꎬＹｕｎｎａｎ ２９ １５８０ １０４°４５′１９″ ２３°２４′１１″ ＹＪ ＪｉｎｃｈａｎｇꎬＹｕｎｎａｎ ２４ １４９０ １０４°４９′１７″ ２３°０７′４７″ ＹＭ ＭａｇｕａｎꎬＹｕｎｎａｎ ２１ １４３８ １０４°２２′２０″ ２２°５６′４８″ ＸＬ ＬｅｙｅꎬＧｕａｎｇｘｉ ２３ １０２０ １０６°２１′１４″ ２４°４８′５４″ ＸＮ ＮａｐｏꎬＧｕａｎｇｘｉ ２４ １０７７ １０５°５７′２１″ ２３°２４′２９″ ＸＹ ＬｉｎｙｕｎꎬＧｕａｎｇｘｉ １９ １０５０ １０６°４４′１３″ ２４°３４′１４″ ＧＣ ＣｅｈｅｎｇꎬＧｕｉｚｈｏｕ ２９ １２７３ １０５°３９′５９″ ２４°５９′２２″ ＧＮ ＮｉｄａｎｇꎬＧｕｉｚｈｏｕ ２９ １４７９ １０４°４８′２４″ ２４°４９′４９″ ＧＷ ＷａｎｇｍｏꎬＧｕｉｚｈｏｕ ２８ １２７４ １０６°２３′１２″ ２５°１４′５４″ ＧＺ ＺｈａｏｊｉａｄｕｉꎬＧｕｉｚｈｏｕ ３０ １３７５ １０５°００′２３″ ２５°０１′５７″ ＧＢ ＢａｊｉｅꎬＧｕｉｚｈｏｕ ２８ １１８２ １０４°５９′４１″ ２４°５４′３９″ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷 ２１２ ３６ Ｔａｂｌｅ２ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓｏｆ１５ＩＳＳＲｐｒｉｍｅｒｓａｎｄ１１ＳＲＡＰ Ｐｒｉｍｅｒｓ ＩＳＳＲｐｒｉｍｅｒｓ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ＳＲＡＰ ｐｒｉｍｅｒｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ Ｆｏｒｗａｒｄｐｒｉｍｅｒ Ｒｅｖｅｒｓｅｐｒｉｍｅｒ ＵＢＣ８１１ (ＧＡ)８Ｃ Ｍｅ１￣Ｅｍ９ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＴＡ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＧＡ ＵＢＣ８１４ (ＣＴ)８Ａ Ｍｅ２￣Ｅｍ３ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＧＣ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＧＡＣ ＵＢＣ８１５ (ＧＡ)８Ｇ Ｍｅ３￣Ｅｍ１１ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＴ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＣＡ ＵＢＣ８２２ (ＴＣ)８Ａ Ｍｅ５￣Ｅｍ２ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＴＧＣ ＵＢＣ８２３ (ＴＣ)８Ｃ Ｍｅ５￣Ｅｍ５ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＡＡＣ ＵＢＣ８２５ (ＡＣ)８Ｔ Ｍｅ５￣Ｅｍ７ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＡＡ ＵＢＣ８２７ (ＴＣ)８Ｇ Ｍｅ５￣Ｅｍ９ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＧＡ ＵＢＣ８３４ (ＡＧ)８ＹＴ Ｍｅ６￣Ｅｍ３ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＡＡ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＧＡＣ ＵＢＣ８３５ (ＡＧ)８ＹＣ Ｍｅ６￣Ｅｍ４ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＡＡ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＴＧＡ ＵＢＣ８４４ (ＣＴ)８ＲＣ Ｍｅ７￣Ｅｍ１０ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＣＣ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＡＧ ＵＢＣ８４５ (ＣＴ)８ＲＧ Ｍｅ８￣Ｅｍ３ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＧＣ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＧＡＣ ＵＢＣ８５３ (ＴＣ)８ＲＴ ＵＢＣ８５７ (ＡＣ)８ＹＧ ＵＢＣ８５９ (ＣＧ)８ＲＣ ＵＢＣ８７３ (ＧＡＣＡ)４ Ｇ Ｎ ｏｆ ９４℃/１ｍｉｎꎬ５０℃/１ｍｉｎꎬ７２℃/１ｍｉｎꎻａｎｄ ａ ｆｉ￣ ( ｓｔ) ａｎｄ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ ( ｍ) (Ｓｌａｔｋｉｎ ａｎｄ Ｂａｒｔｏｎꎬ ｎａｌ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｏｆ ７２ ℃/１０ ｍｉｎ. Ａｌｌ ＰＣＲ ｒｅａｃｔｉｏｎｓ １９８９). Ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ａｍｏｎｇ ｗｅｒｅ ｒｕｎ ｉｎ ｔｈｅ ＡＢＩ２７２０ Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ. Ｔｈｅ ＳＲＡＰ￣ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｗｅ ｇｅｎｅｒａｔｅｄ ａ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｍａｐ ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｏｎ ６％ ｎｏｎ￣ｄｅｎａｔｕｒｅｄ ｖｉａ ＰＯＰＧＥＮＥ. Ｗｅ ａｌｓｏ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｅｄ ａ ｄｅｎｄｒｏｇｒａｍ ｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅ ｇｅｌｓ ｉｎ１×ＴＢＥ ｂｕｆｆｅｒ ｒｕｎｎｉｎｇ ａｔ ３８０Ｖ ｐｅｒ Ｎｅｉ’ｓ (１９７８) ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｍｅｔｈｏｄꎬ ｕｓｉｎｇ ｃｏｎｓｔａｎｔ ｖｏｌｔａｇｅ ｆｏｒ １０ｈ. Ａｆｔｅｒｗａｒｄꎬ ｓｉｌｖｅｒ￣ｓｔａｉｎｉｎｇ ｔｈｅ ｕｎｗｅｉｇｈｔｅｄ ｐａｉｒ￣ｇｒｏｕｐ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ａｖｅｒａｇｅｓ (ＵＰ￣ ｅｔ ａｌ. ｗａｓ ｄｏｎｅ ａｓ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｂｙ Ｂａｓｓａｍ (１９９１). ＧＭＡ) ａｎｄ １ ０００ ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｂｏｏｔｓｔｒａｐｐｉｎｇꎬ Ｔｏ ｅｎｓｕｒｅ ｔｈｅ ｒｅｌｉａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｏｔｙｐｅꎬ ｎｅｇａ￣ ｗｉｔｈ ＴＦＰＧＡ ｖｅｒｓｉｏｎ １３ (Ｍｉｌｌｅｒꎬ １９９７). Ａ Ｍａｎｔｅｌ ｔｉｖｅ ｃｏｎｔｒｏｌｓ ｗｅｒｅ ｒｕｎ ａｔ ｅａｃｈ ｓｔｅｐ ｔｏ ｃｈｅｃｋ ｆｏｒ ｅｘｏｇ￣ ｔｅｓｔ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｔｏ ｅｓｔｉｍａｔｅ ａｎｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｅｎｏｕｓ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ. Ｔｈｅ ｅｘｐｅｒ￣ ｔｈｅ ｍａｔｒｉｃｅｓ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ａｎｄ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｉｍｅｎｔ ｗａｓ ｒｅｐｅａｔｅｄ ｔｗｉｃｅꎬ ａｎｄ ｏｎｌｙ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ｉｎ￣ ｄｉｓｔａｎｃｅｓꎬ ｕｓｉｎｇ ＧｅｎＡｌＥｘ ｖｅｒｓｉｏｎ ６５ (Ｐｅａｋａｌｌ ａｎｄ ｔｅｎｓｅｌｙ ｓｔａｉｎｅｄꎬ ｕｎａｍｂｉｇｕｏｕｓ ｂａｎｄｓ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ Ｓｍｏｕｓｅꎬ２００６). Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ Ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ (ＰＣｏＡ) ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ. ｗａｓ ａｌｓｏ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ＧｅｎＡｌＥｘ ｖｅｒｓｉｏｎ ６５ꎬ １４ Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ Ｊａｃｃａｒｄ’ｓ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｃｏｅｆｆｉ￣ Ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｂａｎｄｓ ｗｅｒｅ ｓｃｏｒｅｄ ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｃｉｅｎｔｓ. Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｐｒｅｓｅｎｃｅ (１) ｏｒ ａｂｓｅｎｃｅ (０) ｏｆ ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｂａｎｄｓ ａｎｄ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ｅｓｔｉｍａｔｅｄ ｂｙ ＰＡＳＳＡＧＥ ｆｏｒ ａｌｌ ｓａｍｐｌｅｓꎬ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｄｉｓｐｌａｙｅｄ ａｓ ｐａｒｔ ｏｆ ａ ｂｉ￣ ｖｅｒｓｉｏｎ ２ (Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ａｎｄｅｒｓｏｎꎬ ２０１１). ｎａｒｙ ｍａｔｒｉｘ. Ｔｈｅｓｅ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｂｙ ＰＯＰＧＥＮＥ ２ Ｒｅｓｕｌｔｓ ｖｅｒｓｉｏｎ １３２ (Ｆｒａｎｃｉｓ ａｎｄ Ｙａｎｇꎬ ２０００) ｔｏ ｅｓｔｉｍａｔｅ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ２１ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ . Ｓｏｍｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓꎬ ｅｇ.ꎬ ｐｅｒｃｅｎｔ￣ Ａ ｔｏｔａｌ ｏｆ ８８ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｎｄｓ ｗｅｒｅ ｓｃｏｒｅｄ ｆｒｏｍ ａｇｅ ｏｆ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ｂａｎｄｓ (ＰＰＢ)ꎬ Ｓｈａｎｎｏｎ’ｓ ｉｎｆｏｒ￣ １５ ＩＳＳＲ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ｏｆ ｗｈｉｃｈ ８１ ｗｅｒｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ Ｉ ｍａｔｉｏｎ ｉｎｄｅｘ (Ｓｈａｎｎｏｎ ａｎｄ Ｗｅａｖｅｒꎬ １９４９)ꎬ ａｎｄ (９２０４％). Ｏｕｒ １１ ＳＲＡＰ ｐｒｉｍｅｒ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ ｐｒｏ￣ Ｈ Ｎｅｉ’ｓ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｅ (Ｎｅｉꎬ１９７８)ꎬ ｗｅｒｅ ｅｖａｌ￣ ｄｕｃｅｄ ２８０ ｂａｎｄｓꎬ ｆｒｏｍ １００ ｔｏ ５００ ｂｐ ｌｏｎｇꎬ ａｃｒｏｓｓ ｕａｔｅｄ ａｔ ｂｏｔｈ ｔｈｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌｓ. Ｇｅ￣ ａｌｌ ４０７ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ. Ｏｆ ｔｈｏｓｅꎬ ２７８ ｗｅｒｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｅｓｔｉ￣ (９９２９％). Ａ ｓｕｍｍａｒｙ ｏｆ ｔｈｅ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｄａｔａ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｍａｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔｓ ｆｏｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ｅａｃｈ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｉｓ 期 ｅｔ ａｌ ２ ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ .: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ２ １３ Ｐ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｉｎ Ｔａｂｌｅ ３. Ｔｈｅ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｅｓ ｒｅｓｕｌｔｅｄ ｉｎ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ( <０００１) Ｈ Ｉ ａ ｅ ｖａｌｕｅ ｏｆ０３８３９ ａｎｄ ａｎ ｖａｌｕｅ ｏｆ０５６４６ ａｔ ｔｈｅ ａｍｏｎｇ ａｎｄ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌ. Ｗｉｔｈｉｎ ｅａｃｈ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ＰＰＢ ｖａｒ￣ ａｎａｌｙｓｉｓꎬ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ (６９％) ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｔｏ￣ ｉｅｄ ｆｒｏｍ ６４８９％ (ＹＪ ａｎｄ ＸＬ) ｔｏ ８９３６％ (ＹＷ). ｔａｌ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｖａｒｉａｎｃｅ ｗａｓ ａｔｔｒｉｂｕｔｅｄ ｔｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ Ｈ Ｔｈｅ ｍｅａｎ ｅ ｗａｓ ０２８４７ꎬ ｒａｎｇｉｎｇ ｆｒｏｍ ０１９７５ ｂｅｔｗｅｅｎ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗｉｔｈｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅ￣ Ｉ (ＸＬ) ｔｏ ０３２３８ (ＹＷ). Ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｍｉｌａｒ ｍａｉｎｄｅｒ (３１％) ｃｏｍｉｎｇ ｆｒｏｍ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｔｒｅｎｄｓꎬ ｒａｎｇｉｎｇ ｆｒｏｍ ０３０２４ (ＸＬ) ｔｏ ０４７９９ (Ｔａｂｌｅ ４). Ｔｈｉｓ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＰＯＰＧＥＮＥ Ｈ Ｇ (ＹＷ). Ｔｈｅ ＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｅｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ａ ｅ ｖａｌｕｅ ｏｆ ｒｅｓｕｌｔｓ ( ｓｔ ＝ ０２５７７). Ｓｉｍｉｌａｒｌｙꎬ ｗｈｅｎ ｔｈｅ ＳＲＡＰ Ｉ ０２８０６ ａｎｄ ａｎ ｏｆ ０４３５９ ａｔ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌ. ｄａｔａ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄꎬ ｍｏｄｅｒａｔｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ Ｇ Ｗｉｔｈｉｎ ｅａｃｈ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ＰＰＢ ｖａｒｉｅｄ ｆｒｏｍ ( ｓｔ＝０２３８３) ｗａｓ ｆｏｕｎｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｔｈｅ ａｖ￣ Ｈ ６２５４％ (ＸＬ) ｔｏ ８２６９％ (ＹＷ). Ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｅ ｅｒａｇｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓｅｘｃｈａｎｇｅｄ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕ￣ Ｉ Ｎｍ ｗｅｒｅ ０１９６３ ｔｏ ０２４１０ (ｍｅａｎ ０２１６６)ꎻ ｆｏｒ ꎬ ｌａｔｉｏｎｓ ｐｅｒ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ( ) ｗａｓ０７２０１ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳ￣ ０２９７４ ｔｏ ０３７０１ (ｍｅａｎ ０３３０１). Ｔｈｅｓｅ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ ａｎｄ ０７９９１ ｗｈｅｎ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｗｅｒｅ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔꎬ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ １５ ｕｓｅｄ (Ｔａｂｌｅ ３). Ｔｈｉｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｌｉｍｉｔｅｄ ｐｏｌｌｅｎ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ａｎｄ ｓｅｅｄ ｄｉｓｐｅｒｓａｌ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. ２３ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｒｉｃｈｅｓｔ ｗｉｔｈｉｎ ＹＷ ａｎｄ ｐｏｏｒｅｓｔ ｗｉｔｈｉｎ ＸＬ. ２２ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ Ｔｈｅ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｏｒ￣ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎｄ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ｒ Ｐ ＡＭＯＶＡ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗｉｔｈ ＧｅｎＡｌＥｘ ６５ ｓｏｆｔｗａｒｅ ｆｏｒ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲｓ ( ＝０４５５ꎻ ＝０００１) ａｎｄ ＳＲＡＰｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｔａｂｌｅ３ Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆ ｂａｓｅｄｏｎＩＳＳＲａｎｄＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｅｓ ＩＳＳＲ ＳＲＡＰ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｈ Ｉ Ｎｍ Ｈ Ｉ Ｎｍ ＰＰＢ/％ ｅ Ｇｓｔ ＰＰＢ/％ ｅ Ｇｓｔ ＹＷ ８９３６ ０３２３８ ０４７９９ ８２６９ ０２４１０ ０３７０１ ＹＧ ８７２３ ０３０８７ ０４５９８ ６８９０ ０２０１５ ０３０７６ ＹＴ ７７６６ ０２８７３ ０４２３９ ６４６６ ０２０８４ ０３１５９ ＹＸ ８０８５ ０２８３１ ０４１９６ ７５２７ ０２１７７ ０３３４６ ＹＦ ７５５３ ０２７８７ ０４１１３ ７０６７ ０２１５４ ０３２７４ ＹＪ ６４８９ ０２３１４ ０３４４８ ６３６０ ０２０５３ ０３１０６ ＹＭ ８７２３ ０３２２０ ０４７６７ ６７１４ ０２０４０ ０３０９５ ＸＬ ６４８９ ０１９７５ ０３０２４ ６２５４ ０１９６３ ０２９７４ ＸＮ ７５５１ ０２６０２ ０３９０７ ６４３２ ０２１９９ ０３２８９ ＸＹ ７７６６ ０２８５１ ０４２１９ ６９２６ ０２１３６ ０３３０１ ＧＣ ８１９１ ０３０２６ ０４４６８ ７１３８ ０２２２７ ０３３８４ ＧＮ ８７２３ ０３１７７ ０４６９４ ７４９１ ０２２７３ ０３４７９ ＧＷ ８２９８ ０２８３８ ０４２５５ ７９８６ ０２３６２ ０３６５０ ＧＺ ８８３０ ０３０３５ ０４５０６ ７９９５ ０２３８４ ０３６５１ ＧＢ ８２９８ ０２９１２ ０４３１２ ６７４９ ０２０１８ ０３０７７ Ｍｅａｎ ８０２８ ０２８４７ ０４２３６ ７０６７ ０２１６６ ０３３０１ Ｓｐｅｃｉｅｓｌｅｖｅｌ ９１６６ ０３８３９ ０５６４６ ０２５７７ ０７２０１ ９９２９ ０２８０６ ０４３５９ ０２３８３ ０７９９１ Ｔａｂｌｅ４ ＡＭＯＶＡｒｅｓｕｌｔｓｆｏｒｇｅｎｅｔｉｃｖａｒｉａｎｃｅｗｉｔｈｉｎａｎｄａｍｏｎｇｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓｂｙＩＳＳＲａｎｄＳＲＡＰ Ｐ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｓｏｕｒｃｅｏｆｖａｒｉａｔｉｏｎ ｄｆ Ｓｕｍｏｆｓｑｕａｒｅｓ Ｍｅａｎｓｑｕａｒｅｓ Ｖａｒｉａｔｉｏｎｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ Ｔｏｔａｌｖａｒｉａｔｉｏｎ/％ ￣ｖａｌｕｅ Ａｍｏｎｇｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ １４ ２４２５０７２ １７３２１９ ５９１８ ３１ <０００１ ＩＳＳＲ Ｗｉｔｈｉｎｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ３９２ ５０８６６０６ １２９７６ １２９７６ ６９ <０００１ Ａｍｏｎｇｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ １４ ４５６９３１９ ３２６３８０ １０８５７ ２５ <０００１ ＳＲＡＰ Ｗｉｔｈｉｎｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ３９２ １２７０９８７５ ３２４２３ ３２４２３ ７５ <０００１ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷 ２１４ ３６ ｒ Ｐ ( ＝０４２１ꎻ ＝０００３) (Ｔａｂｌｅ ５). Ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｆｕｒ￣ ｉｎｃｌｕｄｅｄ １２ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｇｕｉｚｈｏｕꎬ Ｇｕａｎｇｘｉꎬ ｔｈｅｒ ｗｈｙ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ｆｏｒｍｅｄ ａｍｏｎｇ ｔｈｅｓｅ ｐｏｐｕ￣ ａｎｄ Ｙｕｎｎａｎ ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｗｈｉｌｅ Ｃｌｕｓｔｅｒ ＩＩ ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｔｈｅ ｌａｔｉｏｎｓꎬ ｗｅ ｕｓｅｄ ａ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔ ｗｉｔｈ ＰＡＳＳＡＧＥ ｔｏ ｉｎ￣ ＸＬꎬ ＧＷꎬ ａｎｄ ＸＹ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｇｕｉｚｈｏｕ ａｎｄ ｖｅｓｔｉｇａｔｅ ａｎｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒ￣ Ｇｕａｎｇｘｉ ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ. Ｔｈｅ ＰＣｏＡ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ＩＳＳＲ ａｎｄ ｅｎｃｅｓ ａｎｄ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ. Ｈｅｒｅꎬ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｏｒｒｅｌａ￣ ＳＲＡＰ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ｓｈｏｗｎ ｉｎ Ｆｉｇｕｒｅ ３Ａ ａｎｄ Ｆｉｇｕｒｅ ３Ｂꎬ ｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｏｓｅ ｔｗｏ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ｄｅｎｄｒｏ￣ ｒ Ｐ ｆｒｏｍ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｉｓ ( ＝０４３５６ꎻ ＝００００６) ｇｒａｍꎬ ＰＣｏＡ ａｌｓｏ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｒ Ｐ ａｎｄ ＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｉｓ ( ＝０３９５３ꎻ ＝０００２５). ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｍａｉｎ ｃｌｕｓｔｅｒｓ. Ｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ａｎａｌｙｓｅｓ ａｐｐｌｙｉｎｇ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲｓ ３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ (Ｆｉｇ２Ａ) ａｎｄ ＳＲＡＰｓ (Ｆｉｇ２Ｂ) ｃｌｅａｒｌｙ ｒｅｓｏｌｖｅｄ ３１ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｍａｊｏｒ ｃｌｕｓｔｅｒｓ. Ｃｌｕｓｔｅｒ Ｉ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｔａｂｌｅ５ Ｍａｎｔｅｌｔｅｓｔｓｔｏｅｖａｌｕａｔｅｇｅｎｅｔｉｃｄｉｓｔａｎｃｅｓꎬｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ Ｗｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ４０７ ｓａｍｐｌｅｓ ｏｆ ｆｒｏｍ ｄｉｓｔａｎｃｅｓꎬａｎｄｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓｆｏｒ１５ ｎａｔｉｖｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉ￣ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｎａ ａｎｄ ａｎａｌｙｚｅｄ ｔｈｅｉｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ. Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｓｔａｎｃｅｖｅｒｓｕｓ Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｓｔａｎｃｅｖｅｒｓｕｓ Ｔｈｅ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｈｉｇｈｅｒ ｇｅｎｅｔｉｃ Ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃｄｉｓｔａｎｃｅ Ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ Ｃｙｍｂｉｄｉ￣ Ｐ ｒ Ｐ ｒ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ｏｔｈｅｒ ｏｒｃｈｉｄｓꎬ ｅｇ.ꎬ ｕｍ ｇｏｅｒｉｎｇｉｉ Ｇｏｏｄｙｅｒａ ｐｒｏｃｅｒａ Ｃｈａｎｇｎｉｅｎｉａ ａｍｏｅ￣ ＩＳＳＲ ０４５５ ０００１ ０４３６ ０００１ ꎬ ꎬ ｎａ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｆｌａｖｕｍ ＳＲＡＰ ０４２１ ０００３ ０３９５ ０００３ ꎬ ａｎｄ (Ｔａｂｌｅ ６). Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ Ｆｉｇ２ Ａ. ＵＰＧＭＡｄｅｎｄｒｏｇｒａｍｂａｓｅｄｏｎＩＳＳＲｄａｔａꎻＢ. ＵＰＧＭＡｄｅｎｄｒｏｇｒａｍｂａｓｅｄｏｎＳＲＡＰ ｄａｔａ Ｆｉｇ３ Ａ. ＰｒｉｎｃｉｐａｌＣｏｏｒｄｉｎａｔｅＡｎａｌｙｓｉｓｏｆ４０７ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓꎬｂａｓｅｄｏｎＩＳＳＲｄａｔａꎻ Ｂ. ＰｒｉｎｃｉｐａｌＣｏｏｒｄｉｎａｔｅＡｎａｌｙｓｉｓｏｆ４０７ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓꎬｂａｓｅｄｏｎＳＲＡＰ ｄａｔａ 期 ｅｔ ａｌ ２ ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ .: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ２ １５ Ｈ Ｇ Ｔａｂｌｅ６ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓｏｆｖａｌｕｅｓｆｏｒｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙ(ＰＰＢａｎｄ ｅ) ａｎｄｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ( ｓｔ) ｂｅｔｗｅｅｎ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｎｄｏｔｈｅｒｏｒｃｈｉｄｓｐｅｃｉｅｓ Ｈ Ｇ Ｓｐｅｃｉｅｓ ＰＰＢ/％ ｅ ｓｔ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ９１６６ ０３８３９ ０２５７７ ＩＳＳＲ Ｔｈｉｓｐａｐｅｒ ９９２９ ０２８０６ ０２３８３ ＳＲＡＰ Ｔｈｉｓｐａｐｅｒ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｅｔａｌ ７３３０ ０２１７０ ——— ＲＡＰＤ Ｌｉ .ꎬ２００２ｂ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍｆｌｖｕｍ ｅｔａｌ ８２６９ ０２８８４ ０１５４０ ＡＦＬＰ Ｃａｉ .ꎬ２００８ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍｃａｌｃｅｏｌｕｓ ｅｔａｌ ３６４０ ０１４９０ ００５９０ Ａｌｌｏｚｙｍｅ Ｂｒｚｏｓｋｏ .ꎬ２０１１ Ｃｙｍｂｉｄｉｕｍｇｏｅｒｉｇｉｉ ８８１９ ０２６２８ ０２４４０ ＩＳＳＲ ＧａｏａｎｄＹａｎｇꎬ２００６ Ｇｏｏｄｙｅｒａｐｒｏｃｅｒａ ９７０３ ０２９３０ ０３９００ ＲＡＰＤ ＷｏｎｇａｎｄＳｕｎꎬ１９９９ Ｃｈａｎｇｎｉｅｎｉａａｍｏｅｎａ ｅｔａｌ ７６５０ ０１９４１ ——— ＲＡＰＤ Ｌｉ .ꎬ２００２ａ ｅｔａｌ Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ(ａｖｅｒａｇｅ) ——— ——— ０１８７０ ——— Ｆｏｒｒｅｓｔ .ꎬ２００４ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｆｏｒ ｆｏｕｎｄ ｈｅｒｅ ｒａｍｅｔｓ ａｎｄ ｓｕｐｐｏｒｔ ａｎ ａｐｐａｒｅｎｔ ｐｌｅｘｉｆｏｒｍ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｅｔ ａｌ ｗａｓ ｇｒｅａｔｅｒ ｔｈａｎ ｔｈａｔ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｗｈｅｎ ＲＡＰＤ ｍａｒｋｅｒｓ (Ｔｓｉ .ꎬ１９９９). Ａｌｔｈｏｕｇｈ ａ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｈａｓ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｗｉｔｈ ｆｏｕｒ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈａｔ ｓｐｅ￣ ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｆｏｒ ꎬ Ｃｒｉｂｂ ａｎｄ Ｍｃ￣ Ｈ ｅｔ ａｌ ｃｉｅｓ (ＰＰＢ＝７３３％ꎻ ｅ＝０２１７) (Ｌｉ .ꎬ ２００２ｂ). Ｇｏｕｇｈ (１９９７) ｈａｓ ｃｌａｓｓｉｆｉｅｄ ｉｔ ａｓ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ａｎ ｏｕｔ￣ Ｔｈｅ ｐｒｉｍａｒｙ ｒｅａｓｏｎ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ｄｉｓｃｒｅｐａｎｃｙ ｍａｙ ｌｉｅ ｉｎ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｈａｔ ｕｔｉｌｉｚｅｓ ｉｎｓｅｃｔ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ. ｔｈｅ ｃｈｏｉｃｅ ｏｆ ｍａｒｋｅｒｓ. Ｔｈｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ ｏｆ ｐｒｏｄｕｃｔｓ Ｔｈｅｎꎬ ｉｔｓ ｏｕｔ￣ｃｒｏｓｓｉｎｇ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｍｉｇｈｔ ａｌｓｏ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ ｗａｓ ｈｉｇｈｅｒ ｗｉｔｈ ＩＳＳＲｓ ａｎｄ ＳＲＡＰｓ ｔｈａｎ ｗｉｔｈ ＲＡＰ￣ ｔｏ ｉｔｓ ｈｉｇｈｅｒ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｗｉｔｈ ｔｈａｔ ｏｆ ｉｎｂｒｅｅｄ￣ Ｄｓꎬ ｔｈｅｒｅｂｙ ｐｒｏｖｉｄｉｎｇ ｍｏｒｅ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｂｏｕｔ ａ ｐａｒ￣ ｉｎｇ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｅｈｌｅｒｓ ａｎｄ Ｐｅｄｅｒｓｅｎꎬ ２０００). ３２ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｔｉｃｕｌａｒ ｇｅｎｏｍｅ. Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｍｏｌｅｃｕ￣ ｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓ ａｒｅ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｍｏｒｅ ｓｔａｂｌｅ ａｎｄ ｒｅｌｉａｂｌｅ Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ａｓｓｕｍｐｔｉｏｎ ｏｆ Ｈａｒｄｙ－Ｗｅｉｎｂｅｒｇ ｅ￣ ｗｈｅｎ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＲＡＰＤ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ (Ｄｉｒｌｅ￣ ｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍꎬ ｗｅ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｍｏｄｅｒａｔｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａ￣ ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｇ ｗａｎｇｅｒ .ꎬ１９９８ꎻ Ｅｓｓｅｌｍａｎ .ꎬ１９９９ꎻ Ｇｉｌｂｅｒｔ ｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｏｕｒ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ ( ｓｔꎬ ｅｔ ａｌ .ꎬ １９９９). Ａｎｏｔｈｅｒ ｅｘｐｌａｎａｔｉｏｎ ｉｓ ｔｈａｔ ｗｅ ｕｓｅｄ ０２５７７ ｂｙ ＩＳＳＲꎻ０２３８３ꎬ ｂｙ ＳＲＡＰ). ＡＭＯＶＡ ａｎａ￣ ｍｏｒｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ ｓａｍｐｌｅｓ ｔｈａｎ ｗｅｒｅ ｌｙｓｉｓ ａｌｓｏ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ３１％ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ２５％ (ＳＲＡＰ) ｅｔ ａｌ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ａｎ ｅａｒｌｉｅｒ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ ｂｙ Ｌｉ . ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｅｘｉｓｔｅｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ａｓ ｗｅｌｌ Ｈ (２００２ｂ). Ｓｏｍｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ( ｅ) ａｒｅ ｓｅｎｓｉ￣ ａｓ ６９％ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ７５％ (ＳＲＡＰ) ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ｔｉｖｅ ｔｏ ｓａｍｐｌｅ ｓｉｚｅꎬ ｔｈｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｃｉｎｇ ｈｏｗ ｗｅｌｌ ｔｈｏｓｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (Ｔａｂｌｅ ４). Ｔｈｉｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｓ ｈｉｇｈｅｒ ｅｔ ａｌ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ｃａｎ ｂｅ ｅｓｔｉｍａｔｅｄ (Ｌｉ .ꎬ ２０００). ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｗｉｔｈ ａｆｆｉｎｉｔｉｖｅꎬ ｉｎｓｅｃｔ￣ｐｏｌｌｉｎａｔｅｄ ｏｒｃｈｉｄ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｃａｌｃｅｏｌｕｓ Ｇ Ｐｌａｎｔｓ ｏｆ ａｒｅ ｐｅｒｅｎｎｉａｌ ａｎｄ ｈｅｒｂａ￣ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ( ｓｔ＝００５９ꎻ ｅｔ ａｌ Ｃ ｆｌａｖｕｍ Ｇ ｃｅｏｕｓ. Ｔｈｅｉｒ ｄｅｃａｄｅｓ￣ｌｏｎｇ ｌｉｆｅ ｓｐａｎｓ ｍａｙ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ Ｂｒｚｏｓｋｏ .ꎬ ２０１１) ａｎｄ ( ｓｔ＝０１５４ꎻ ｅｔ ａｌ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｈｉｇｈ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ (Ｎｙｂｏｍꎬ ２００４). Ｍｏ￣ Ｃａｉ .ꎬ ２００８)ꎬ ｆｏｒ ｗｈｉｃｈ ｓｅｅｄｓ ａｒｅ ｗｉｎｄ￣ｄｉｓｐｅｒ￣ ｅｔ ａｌ. ｒｅｏｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｍｏｄｅ ｉｓ ａｎ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｆａｃｔｏｒ ａｆ￣ ｓｅｄ. Ｆｏｒｒｅｓｔ (２００４) ｈａｖｅ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｔｈａｔ ｏｒｃｈｉｄ Ｇ ｆｅｃｔｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ (Ｈａｍｒｉｃｋꎬ １９８２ꎻ Ｈａｍｒｉｃｋ ｓｔ ｖａｌｕｅｓ ｒａｎｇｅ ｆｒｏｍ ００１２ ｔｏ ０９２４ (ａｖｅｒａｇｅ ａｎｄ Ｇｏｄｔꎬ １９９０). Ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｅｐｒｏｄｕｃｅｓ ｂｙ ｂｏｔｈ ０１８７)ꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｓｅｘｕａｌｌｙ ａｎｄ ａｓｅｘｕａｌｌｙꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ａｒｅ ｈｕｇｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ａｓ Ｇ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｓ ａ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｔｏ ｍａｘｉｍｉｚｅ ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｓｉｔｙ ａｎｄ ｒｅｐｒｏ￣ ｓｈｏｗｎ ｈｅｒｅꎬ ｔｈｅ ｓｔ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ (０２５７７ ｅｔ ａｌ ｄｕｃｔｉｖｅ ｓｕｃｃｅｓｓ (Ｙａｎ .ꎬ １９９９). Ｏｎｅ ｃａｐｓｕｌｅ ｏｆ ａｎｄ ０２３８３) ｗｅｒｅ ｈｉｇｈｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｅ ａｖｅｒａｇｅ ｏｆ ０１８７ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｃｏｎｔａｉｎｓ ｍｏｒｅ ｔｈａｎ５０００ ｓｅｅｄｓꎬｗｈｉｃｈ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｆｏｒ ｏｔｈｅｒ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ. ｃａｎ ｅｎｓｕｒｅ ａ ｌａｒｇｅ ｇｅｎｅ ｐｏｏｌ ｔｈａｔ ｃａｎ ｐｒｏｖｉｄｅ ａｂｕｎ￣ Ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｓ ｕｓｕ￣ ｅｔ ａｌ ｄａｎｔ ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｔｅｓ (Ｌｕｏ .ꎬ ２００３). Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ａｌｌｙ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｄ ｂｙ ｆａｃｔｏｒｓ ｓｕｃｈ ａｓ ｍａｔｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍ ａｎｄ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｈａｓ ｓｔｒｏｎｇ ｃａｐａｃｉｔｙ ｏｆ ｃｌｏｎａｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃ￣ ｅｘｔｅｎｔ ｏｆ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ (Ｈａｍｒｉｃｋ ａｎｄ Ｇｏｄｔꎬ１９９０). Ｔｈｅ Ｎｍ ｔｉｏｎꎬ ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ｒｈｉｚｏｍｅｓ ｔｈａｔ ｏｆｔｅｎ ｆｏｒｍ ｎｕｍｅｒｏｕｓ ｔｈｅｏｒｙ ｏｆ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ｌｏｗ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷 ２１６ ３６ ｅｔ ａｌ ｖａｌｕｅｓ (ｉｅ.ꎬ <１) ｃａｎｎｏｔ ｐｒｅｖｅｎｔ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｌａｔｉｏｎ ｔｏ ａｎｏｔｈｅｒ (Ｇｏｄｔ .ꎬ２００５). Ｈｅｒｅꎬ ｈｏｗｅｖ￣ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｉｓ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｒｉｆｔ ｅｒꎬ ｗｅ ｃｏｕｌｄ ｎｏｔ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ａｎｙ ｓｕｃｈ ｂａｒｒｉｅｒꎬ ｏｔｈｅｒ (Ｗｒｉｇｈｔꎬ １９３１ꎻ Ｈａｒｔｌ ａｎｄ Ｃｌａｒｋꎬ １９８９). Ｏｕｒ ｓｔｕｄｙ ｔｈａｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅꎬ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｃｌｕｓｔｅｒｓ Ｉ ａｎｄ Ｎｍ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ０７２０１ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ０７９９１ ＩＩ. Ｏｕｒ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ａ ｒｅｍａｒｋａｂｌｅ ｃｏｒｒｅｌａ￣ Ｐ (ＳＲＡＰ)ꎬ ｂｏｔｈ ｌｅｓｓ ｔｈａｎ １ꎬ ｗｈｉｃｈ ａｇｇｒａｖａｔｅｄ ｔｈｅ ｔｉｏｎ ( <００５) ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ａｎｄ ｅｌｅｖａ￣ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｔｈｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｔｉｏｎ. Ｍａｎｙ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｓｈｏｗｎ ｔｈａｔ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ￣ａｓｓｏｃｉ￣ ｏｆ ｐｏｌｌｅｎ ａｎｄ ｓｅｅｄｓ ｉｓ ａ ｍａｊｏｒ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔ ｏｆ ｇｅｎｅ ａｔｅｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｐｌａｙ ａｎ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｒｏｌｅ ｉｎ ｆｌｏｗ ｉｎ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (Ｌｉ ａｎｄ Ｃｈｅｎꎬ ２００４). ｄｉｒｅｃｔｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ (Ｂａ￣ ｅｔ ａｌ Ｂｅｃａｕｓｅ ｍｏｓｔ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｅｌｙ ｐｒｉｍａｒｉｌｙ ｏｎ ｗｉｎｄ ｙｅｒꎬ １９９２ꎻ Ｌｉ ａｎｄ Ｃｈｅｎꎬ ２００４ꎻ Ｊｉａｎｇ .ꎬ ２００５). Ｒｈｏｄｉｏｌａ ｄｉｓｐｅｒｓａｌꎬ ｔｈｅｉｒ ｓｅｅｄｓ ｃａｎ ｍｏｖｅ ａｃｒｏｓｓ ｇｒｅａｔ ｄｉｓ￣ Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｅｔ ａｌ ａｎｇｕｓｔａ ｔａｎｃｅｓ (Ｓｗａｍｙ .ꎬ ２００４ꎬ ２００７). Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔ ｔｏ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ａｔ Ｃｈａｎｇｂａｉ Ｍｏｕｎｔａｉｎ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｒｅｌａｔｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ａｎｄ ꎬ ａｓ ｔｈｅ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｄｅｃｒｅａｓｅｓ ｄｕｅ ｔｏ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ (Ｙａｎ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｅｔ ａｌ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ａｒｅ ｎｏｔ ｃａｒｒｉｅｄ ａｓ .ꎬ １９９９). Ｌｉｋｅｗｉｓｅꎬ ａｐａｒｔ ｆｒｏｍ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｆａｒ (Ｚｈａｎｇꎬ ２０１２). Ｔｈｉｓ ｍｉｇｈｔ ｅｘｐｌａｉｎ ｗｈｙ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅꎬ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ ｍａｙ ｂｅ ａｎ ｉｍｐｏｒ￣ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｓ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈ ｔａｎｔ ｆａｃｔｏｒ ｔｈａｔ ｄｉｖｉｄｅｄ ｏｕｒ ｐｏｐｕｌａ￣ ｉｎ ｔｈａｔ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ａｎｏｔｈｅｒ ｆａｃｔｏｒ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｉｏｎｓ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｇｅｎｅｔｉｃ ｃｌｕｓｔｅｒｓ. ３４ Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｒｅｃｏｍｍｅｎｄａｔｉｏｎｓ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｓ ａｎｔｈｒｏｐｏｇｅｎｉｃ. Ｂｅ￣ ｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｈｉｇｈ ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ ｖａｌｕｅꎬ ｍｏｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｏｌ￣ Ｆｏｒ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｔｈｅ ｇｏａｌｓ ｏｆ ｃｏｎｓｅｒｖａ￣ ｄｅｒꎬ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ ｐｌａｎｔｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｗｉｌｄ ｔｉｏｎ ａｒｅ ｔｏ ｅｎｓｕｒｅ ｔｈｅ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｏｆ ｐｏｐｕｌａ￣ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｌｅａｖｉｎｇ ｂｅｈｉｎｄ ｏｎｌｙ ｔｈｅ ｙｏｕｎｇｅｒ ｓｐｅｃｉ￣ ｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｔｏ ｍａｉｎｔａｉｎ ｔｈｅｉｒ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｅｔ ａｌ ｍｅｎｓ (Ｌｕｏ .ꎬ ２００３). (Ｈａｍｒｉｃｋ ａｎｄ Ｇｏｄｔ １９９０ꎻ Ｗｏｎｇ ａｎｄ Ｓｕｎ １９９９). ３３ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ Ｇｉｖｅｎ ｏｕｒ ｆｉｎｄｉｎｇｓꎬ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ Ｃｌｕｓｔｅｒ ＩＩ ｃｏｍ￣ Ｂｏｔｈ ｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ａｎｄ ＰＣｏＡ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎｓ ｄｉｖｉｄ￣ ｐｒｉｓｅｄ ｔｈｅ ＸＬꎬ ＧＷꎬ ａｎｄ ＸＹ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｅｄ ｔｈｅ １５ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｇｕｉｚｈｏｕ ａｎｄ Ｇｕａｎｇｘｉ ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｈａｖｅ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｌｏｗ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｃｌｕｓｔｅｒｓꎬ ｗｉｔｈ ｏｎｅ ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ １２ ｐｏｐｕｌａ￣ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｒｅｃｏｍｍｅｎｄ ｔｈａｔ ｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｙｕｎｎａｎ ａｎｄ Ｇｕｉｚｈｏｕ ａｎｄ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｃｏｎｔａｉ￣ ｔｈｅｓｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｂｅ ｐｒｉｏｒｉｔｉｚｅｄ ｆｏｒ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｐｒｏ￣ ｎｉｎｇ ｔｗｏ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｇｕａｎｘｉ ｐｌｕｓ ｏｎｅ ｉｎ Ｇｕｉｚｈｏｕ. ｔｅｃｔｉｏｎ. Ｍｅａｎｗｈｉｌｅꎬ ｉｔ ｉｓ ｎｅｃｅｓｓａｒｙ ｔｏ ｃａｒｒｙ ｏｕｔ ｔｈｅ ｅｘ ＰＣｏＡ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｈｉｇｈ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｉｎ Ｃｌｕｓｔｅｒ Ｉꎬ ￣ｓｉｔｕ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｗｈｅｒｅａｓ Ｃｌｕｓｔｅｒ ＩＩ ｓｈｏｗｅｄ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｉｓｏｌａ￣ ａｓ ｓｏｏｎ ａｓ ｐｏｓｓｉｂｌｅꎬ ｔｏ ｓｔｏｒｅ ｕｐ ｍａｓｓ ｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｉｔｓ ｔｈｒｅｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ Ｍａｎｔｅｌ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｏｆ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｆｏｒ ｗｉｌｄ ｒ Ｐ ｔｅｓｔｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ＩＳＳＲ ( ＝ ０４５５ꎬ ＝ ｒｅ￣ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎬ ｔｏ ｒｅｎｅｗ ｔｈｉｓ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒ Ｐ ０００１) ａｎｄ ＳＲＡＰ ( ＝０４２１ꎬ ＝０００３) ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ａｎｄ ｔｏ ｍａｋｅ ｉｔ ｔｈｒｉｖｉｎｇ. ｔｈａｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｗａｓ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ４ Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ ｄｉｓｔａｎｃｅꎬ ａ ｐｈｅｎｏｍｅｎｏｎ ｔｈａｔ ｉｓ ｃｏｍｍｏｎｌｙ ｆｏｕｎｄ ｉｎ ｅｔ ａｌ ｅｎｄｅｍｉｃ ａｎｄ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ(Ｇｏｄｔ .ꎬ２００５ꎬ Ｕｓｉｎｇ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓꎬ ｗｅ ｅｔ ａｌ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ Ｌｕａｎ .ꎬ ２００６). Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｉｓ ｎｏｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｔｈａｔ ｐｌａｎｔｓ ｏｆ ｅｘｈｉｂｉｔ ａ ｉｔｓｅｌｆ ｅｎｄｅｍｉｃ ｔｏ Ｃｈｉｎａꎬ ｉｔ ｉｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｈｉｇｈ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆ￣ ａｎｄ ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ ｔｈｅｒｅ. ｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｓ ｍｏｄｅｒａｔｅ ａｍｏｎｇ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａ￣ Ｗｈｅｎ ｏｕｒ ｓａｍｐｌｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ａｓｓｉｇｎｅｄ ｔｏ ｔｗｏ ｔｉｏｎｓ ｉｓ ｕｓｕａｌｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｂａｒｒｉｅｒｓꎬ ｓｕｃｈ ｃｌｕｓｔｅｒｓꎬ ｔｈｅ ｏｎｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ｓｉｔｅｓ ｉｎ Ｙｕｎｎａｎ ａｎｄ ａｓ ｈｉｇｈ ｍｏｕｎｔａｉｎｓ ａｎｄ ｒｉｖｅｒｓꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｋｅ ｇｅｎｅ ｅｘ￣ Ｇｕｉｚｈｏｕ ｓｈｏｗｅｄ ｈｉｇｈ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｈｉｌｅ ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｇｕａｎ￣ ｃｈａｎｇｅ ａｌｍｏｓｔ ｉｍｐｏｓｓｉｂｌｅ ｔｏ ａｃｈｉｅｖｅ ｆｒｏｍ ｏｎｅ ｐｏｐｕ￣ ｇｘｉ ｓｉｔｅｓ ｈａｄ ｌｏｗ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ. Ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ 期 ｅｔ ａｌ ２ ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ .: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ２ １７ ｅｔ ａｌ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｂｉｏｌｏｇ￣ ＤｉｒｌｅｗａｎｇｅｒＥꎬＰｒｏｎｉｅｒ Ｖꎬ Ｐａｒｖｅｒｙ Ｃ .ꎬ １９９８. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｌｉｎｋａｇｅ Ｐｒｕｎｕｓｐｅｒｓｉｃａ ｍａｐｏｆｐｅａｃｈ( Ｌ.) ｕｓｉｎｇｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌａｎｄｍｏｌｅｃ￣ ｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｃａｐａｃｉｔｙ ｆｏｒ ｓｅｅｄ ｄｉｓｐｅｒｓ￣ Ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ９７ ｕｌａｒｍａｒｋｅｒｓ [Ｊ]. ꎬ : ８８８— ａｌꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｄｉｓｔａｎｃｅ ８９５ ａｎｄ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ. Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｉｌｌ ｂｅ ｂｅｎｅｆｉ￣ ＤｏｙｌｅＪＪꎬＤｏｙｌｅＪＬꎬ１９８７.ＡｒａｐｉｄＤＮＡｉｓｏｌａｔｉｏｎｐｒｏｃｅｄｕｒｅｆｏｒｓｍａｌｌ Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ １９ ｃｉａｌ ｔｏ ｍａｎａｇｅｒｓ ｗｈｏ ｃａｎ ｄｅｖｅｌｏｐ ｒｅａｓｏｎａｂｌｅ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｏｆ ｆｒｅｓｈ ｌｅａｆ ｔｉｓｓｕｅ [Ｊ]. ꎬ : ｆｏｒ ｃｏｎｓｅｒｖｉｎｇ ｔｈｉｓ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄ. １１—１５ ＥｈｌｅｒｓＢＫꎬＰｅｄｅｒｓｅｎＨＡꎬ２０００.Ｇｅｎｅｔｉｃｖａｒｉａｔｉｏｎｉｎｔｈｒｅｅｓｐｅｃｉｅｓｏｆ Ｅｐｉｐａｃｔｉｓ Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｍｅｎｔｓ (Ｏｒｃｈｉｄａｅｅａｅ): ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｓｃａｌｅ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｉｎ￣ : Ｔｈｅ ａｕｔｈｏｒｓ ｔｈａｎｋ Ｙａｎｇ Ｊｕｎ￣Ｂｏꎬ Ｌｉ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｌｉｎｎｅａｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ６９ ｆｅｒｅｎｃｅｓ [Ｊ]. ꎬ : Ｈｏｎｇ￣Ｔａｏꎬ ａｎｄ Ｚｈａｎｇ Ｚｈｉ￣Ｒｏｎｇ ｆｏｒ ｈｅｌｐ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ４１１—４３０ ｗｏｒｋ ａｎｄ ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ. ｅｔａｌ ＥｓｓｅｌｍａｎＥＪꎬＬｉＪＱꎬＣｒａｗｆｏｒｄＤＪ .ꎬ１９９９.Ｃｌｏｎａｌｄｉｖｅｒｓｉｔｙｉｎｔｈｅ Ｃａｌａｍａｇｒｏｓｔｉｓｐｏｒｔｅｒｉ ｒａｒｅ ｓｓｐ.ｉｎｓｐｅｒａｔａ(Ｐｏａｃｅａｅ):ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ Ｍｏｌｅｃｕ￣ : ｒｅｓｕｌｔｓｆｏｒａｌｌｏｚｙｍｅｓａｎｄＲＡＰＤａｎｄＩＳＳＲｍａｒｋｅｒｓ [Ｊ]. ｌａｒＥｃｏｌｏｇｙ ８ ＢａｓｓａｍＢＪꎬＣａｅｔａｎｏ￣ＡｎｏｌｌｅＧꎬＧｒｅｓｓｈｏｆｆＰＭꎬ１９９１. Ｆａｓｔａｎｄ ｓｅｎｓｉ￣ ꎬ :４４３—４５１ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｅｔａｌ ｔｉｖｅｓｉｌｖｅｒｓｔａｉｎｉｎｇｏｆＤＮＡｉｎｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅｇｅｌｓ [Ｊ]. ＦｏｒｒｅｓｔＡＤꎬＨｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈＭＬꎬＨｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈＰＭ .ꎬ２００４.Ｐｏｐｕ￣ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １９６ Ｓｐｉｒａｎｔｈｅｓ ｒｏ￣ ꎬ :８１—８４ ｌａｔｉｏｎｇｅｎｅｔｉｃｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｉｎ Ｅｕｒｏｐｅａｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｍａｎｚｏｆｆｉａｎａ ＢａｙｅｒＲＪꎬ１９９２.Ａｌｌｏｚｙｍｅｖａｒｉａｔｉｏｎꎬｇｅｎｅｃｏｌｏｇｙꎬａｎｄｐｈｙｔｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ ｓｅｔｉｎｔｈｅ ｃｏｎｔｅｘｔ ｏｆ ｏｔｈｅｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｏｒｃｈｉｄｓ Ａｎｔｅｎｎａｒｉａ ａｒｃｕａｔａ Ｈｅｒｅｄｉｔｙ ９２ ｏｆ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｃｅ)ꎬ ａ ｒａｒｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ [Ｊ]. ꎬ :２１８—２２７ ｇｒｅａｔＢａｓｉｎａｎｄＲｅｄＤｅｓｅｒｔｗｉｔｈｓｍａｌｌｄｉｓｊｕｎｃｔｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ [Ｊ]. ＦｒａｎｃｉｓＣＹꎬ Ｙａｎｇ ＲＣꎬ ２０００. ＰＯＰＧＥＮＥꎬ Ｖｅｒｓｉｏｎ １３２. ｈｔｔｐ: // ＡｍｅｒｉｃａｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｏｔａｎｙ ７９ ꎬ :８７２—８８１ ｗｗｗｕａｌｂｅｒｔａｃａ/＿ｆｙｅｈ/ｉｎｄｅｘｈｔｍ ｅｔ ａｌ Ｃｙｍｂｉｄｉｕｍｇｏｅｒｉｎｇｉｉ ＢｒｚｏｓｋｏＥꎬＢｌｅｗｓｋａＡＷꎬＴａłａłａｊＩ .ꎬ２０１１. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ＧａｏＬꎬＹａｎｇＢꎬ２００６. Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆｗｉｌｄ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍｃａｌｃｅｏｌｕｓ ＰｌａｎｔＳｙｓｔｅｍａｔｉｃｓａｎｄＥｖｏ￣ ｉｎＰｏｌａｎｄ [Ｊ]. (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｈｕｂｅｉ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｉｓ ｌｕｔｉｏｎ ２９５ ＢｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙＳｃｉｅｎｃｅ １４ ꎬ :８３—９６ [Ｊ]. ꎬ :２５０—２５７ ｅｔａｌ ＣａｉＮＦꎬＹａｎＮꎬＨｕＨ .ꎬ２００８. Ｇｅｎｅｔｉｃｓｔｒｕｃｔｕｒｅａｎｄｃｌｏｎａｌｄｉ￣ ＧｅｏｒｇｅＳꎬＳｈａｒｍａＪꎬＹａｄｏｎＶＬꎬ２００９. Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆｔｈｒｅｅｅｎ￣ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｆｌａｖｕｍ Ｐｉｐｅｒｉａｙａｄｏｎｎｉ ｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ ｄａｎｇｅｒｅｄａｎｄｎａｒｒｏｗｅｎｄｅｍｉｃ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ａｓ￣ ＡｃｔａＢｏｔａｎｉｃａＹｕｎｎａｎｉｃａ ３０ ＡｍｅｒｉｃａｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｏｔａ￣ Ｓｏｕｔｈ￣ＷｅｓｔＣｈｉｎａ [Ｊ]. ꎬ :６９—７５ ｓｅｓｓｅｄｗｉｔｈＩＳＳＲｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍｓ [Ｊ]. ｎｙ ９６ ＣａｉＸＹꎬＦｅｎｇＺＹꎬＺｈａｎｇＸＸꎬ２０１１.Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ꎬ :２０２０—２０２２ Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ ｌｏｄｄｉｇｅｓｉｉ ｅｔａｌ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆａｎ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｏｒｃｈｉｄ ( Ｒｏｌｆｅ) ＧｉｌｂｅｒｔＪＥꎬＬｅｗｉｓＲＢꎬＷｉｌｋｉｎｓｏｎＭＪ .ꎬ１９９９.Ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇａｎａｐ￣ Ｓｃｉｅｎｔｉａ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕ￣ ｆｒｏｍＣｈｉｎａ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｂｙ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ [Ｊ]. ｐｒｏｐｒｉａｔｅｓｔｒａｔｅｇｙｔｏａｃｃｅｓｓ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ ｐｌａｎｔ ｇｅｒｍｐｌａｓｍ ｒａｅ １２９ Ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ９８ ꎬ :８７７—８８１ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎｓ [Ｊ]. ꎬ : １１２５— ＣｈａｎｇＷꎬＺｈａｎｇ ＳＢꎬ Ｌｉ ＳＹꎬ２０１１. Ｅｃｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ １１３１ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ ｌｅａｆｔｒａｉｔｓ ｉｎ ａｎｄ [Ｊ]. ＧｏｄｔＭＪＷꎬ Ｃａｐｌｏｗ Ｆꎬ Ｈａｍｒｉｃｋ ＪＬꎬ２００５. Ａｌｌｏｚｙｍｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ Ｐｌａｎｔａｒｕｍ １４１ Ｃａｓｔｉｌｌｅｊａｌｅｖｉｓｅｃｔａ ꎬ :３０—３９ ｆｅｄｅｒａｌｌｙｔｈｒｅａｔｅｎｅｄｇｏｌｄｅｎｐａｉｎｔｂｒｕｓｈꎬ (Ｓｃｒｏ￣ ｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎＧｅｎｅｔｉｃｓ ６ ＣｈｅｎＴＹꎬＣｈｅｎＪＴꎬＣｈａｎｇＷＣꎬ２００４.Ｐｌａｎｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｔｈｒｏｕｇｈｄｉ￣ ｐｈｕｌａｒｉａｃｅａｅ) [Ｊ]. Ｃ ꎬ :８７—９９ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ａ￣ ｒｅｃｔｓｈｏｏｔｂｕｄｆｏｒｍａｔｉｏｎｆｒｏｍｌｅａｆｃｕｌｔｕｒｅｓｏｆ ｏｒ￣ ＨａｍｒｉｃｋＪＬꎬ１９８２. Ｐｌａｎｔ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ [Ｊ]. ＰｌａｎｔＣｅｌｌ Ｔｉｓｓｕｅ ａｎｄＯｒｇａｎＣｕｌｔｕｒｅ ７６ ｍｅｒｉｃａｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｏｔａｎｙ ６９ ｃｈｉｄｓ [Ｊ]. ꎬ ꎬ ꎬ :１１—１５ ꎬ : １６８５—１６９３ ＣｈｕｎｇＳＹꎬ Ｃｈｏｉ ＳＨꎬ ２０１２. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａ￣ Ｈａｍｒｉｃｋ ＪＬꎬ Ｇｏｄｔ ＭＪꎬ １９９０. Ａｌｌｏｚｙｍｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｍｏｎｇ ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｆｉｃ ｈｙｂｒｉｄ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ａｎｄ ｐａｒｅｎｔａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ [Ａ]. Ｉｎ: Ｂｒｏｗｎ ＡＨＤꎬ Ｃｌｅｇｇ ＭＴꎬ Ｋａｈｌｅｒ ＡＬꎬ Ｗｅｉｒ ＢＳ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｐｌａｎｔ Ｐｌａｎｔ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ ａｎｄ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｒｅ￣ ｖｉａｒｉｂｏｓｏｍａｌＤＮＡｓｅｑｕｅｎｃｅａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ]. (ｅｄｓ.)ꎬ ꎬ ꎬ ＳｙｓｔｅｍａｔｉｃｓａｎｄＥｖｏｌｕｔｉｏｎ ２９８ ｓｏｕｒｃｅｓ ꎬ :１８９７—１９０７ [Ｍ]. ＳｉｎａｕｅｒꎬＳｕｎｄｅｒｌａｎｄꎬＭＡꎬＵＳＡꎬ４３—６３ ＴｈｅＧｅｎｕｓＰａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ＰｒｉｎｃｉｐｌｅｏｆＰｏｐｕｌａｔｉｏｎＧｅｎｅｔｉｃｓ ＣｒｉｂｂＰＪꎬ１９９８. [Ｍ]. ＢｏｒｎｅｏꎬＫｏｔａＫｉｎ￣ ＨａｒｔｌＤＬꎬＣｌａｒｋＡＧꎬ１９８９. ꎬ２ｎｄｅｄｎ ａｂａｌｕꎬ＆ＲｏｙａｌＢｏｔａｎｉｃａｌＧａｒｄｅｎꎬＫｅｗꎬＬｏｎｄｏｎꎬＵＫ [Ｍ]. ＳｉｎａｕｅｒꎬＳｕｎｄｅｒｌａｎｄꎬＭＡꎬＵＳＡ Ｔｈｅ Ｔｈｉｎ Ｄｉｖｉｄｅ￣Ｓｌｉｐｐｅｒ Ｏｒｃｈｉｄ Ｄｉｓｔｒｉ￣ ｅｔ ａｌ ＣｒｉｂｂＰＪꎬＭｃＧｏｕｇｈＮꎬ１９９７. ＪｉａｎＳＧꎬＺｈｏｎｇＹꎬ Ｌｉｕ Ｎ .ꎬ ２００６. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｅｎ￣ ｂｕｔｉｏｎｓｉｎＣｈｉｎａ Ｃｙｃａｓｆａｉｒｙｌａｋｅａ [Ｍ]. ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＥｕｒｏｐｅａｎＯｒｃｈｉｄＣｏｎ￣ ｄａｎｇｅｒｅｄｅｎｄｅｍｉｃｓｐｅｃｉｅｓ (Ｃｙｃａｄａｃｅａｅ) ｉｎＣｈｉ￣ Ｂｉｏｌｏｇｉｃ Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｆｅｒｅｎｃｅꎬＧｅｎｅｖａꎬＳｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ ｎａａｎｄｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｆｏｒｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ [Ｊ]. ꎬ １５ ＤｉｎｇＧꎬＺｈａｎｇＤＺꎬＤｉｎｇＸＹꎬ２００８. Ｇｅｎｅｔｉｃｖａｒｉａｔｉｏｎａｎｄｃｏｎｓｅｒｖａ￣ :１６８１—１６９４ Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ ｏｆｆｉｃｉ￣ ｅｔａｌ Ｒｏｅｇ￣ ｔｉｏｎｏｆｔｈｅｅｎｄａｎｇｅｒｅｄＣｈｉｎｅｓｅ ｅｎｄｅｍｉｃ ｈｅｒｂ ＪｉａｎｇＺＬꎬＹａｎｇＸＭꎬＷａｎｇＲ .ꎬ２００５.Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆ ｎａｌｅ ＰｌａｎｔＳｙｓｔｅｍａｔｉｃｓａｎｄＥｖｏｌｕ￣ ｎｅｒｉａｔｈｏｒｏｌｄｉａｎａ ｂａｓｅｄｏｎＳＲＡＰａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ]. (Ｏｌｉｖ.) Ｋｅｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＳＳＲ ａｎａｌｙ￣ ｔｉｏｎ ２７６ ＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｌａｎｔＧｅｎｅｔｉｃＲｅｓｏｕｒｃｅｓ ６ ꎬ :１４９—１５６ ｓｅｓ [Ｊ]. ꎬ :３１５—３３１ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷 ２１８ ３６ ＭｏｌｅｃｕｌａｒＥｃｏｌｏｇｙＮｏｔｅｓ ６ ＬｉＡꎬ Ｗａｎｇ ＫＱꎬ Ｇｅ Ｓꎬ ２０００. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ ꎬ :２８８—２９５ Ｖｉｏｌａｔｅｎｕｉｃｏｒｎｉｓ ＰＡＳＳＡＧＥ Ｐａｔｔｅｒｎ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｏｆ ｗｉｔｈ ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｔｏ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｓｔｒａｔｅ￣ Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ ＭＳꎬ Ａｎｄｅｒｓｏｎ ＣＤꎬ ２０１１. : ꎬ ＡｃｔａＢｏｔａｎｉｃａＳｉｎｉｃａ ４２ ＳｐａｔｉａｌＳｔａｔｉｓｔｉｃｓａｎｄＧｅｏｇｒａｐｈｉｃＥｘｅｇｅｓｉｓ. Ｖｅｒｓｉｏｎ２ Ｍｅｔｈ￣ ｇｉｅｓ [Ｊ]. ꎬ :１０６９—１０７４ [Ｍ]. ｅｔａｌ ｏｄｓｉｎＥｃｏｌｏｇｙ＆Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ２ ＬｉＡꎬＬｕｏＹＢꎬＸｉｏｎｇＺＴ .ꎬ２００２ａ. Ａｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙｓｔｕｄｙｏｎ ｃｏｎ￣ ꎬ :２２７—２３２ Ａｃｔａ ｓｅｒｖａｔｉｏｎｇｅｎｅｔｉｃｓｏｆｔｈｒｅｅ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ [Ｊ]. ＳｈｉＪꎬＣｈｅｎｇ Ｊꎬ Ｌｕｏ Ｄꎬ ２００７. Ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｓｙｎｄｒｏｍｅｓ ｐｒｅｄｉｃｔ ｂｒｏｏｄ￣ ＢｏｔａｎｉｃａＳｉｎｉｃａ ４４ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ꎬ :２５０—２５２ ｓｉｔｅ ｄｅｃｅｐｔｉｖｅ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｂｙ ｆｅｍａｌｅ ｈｏｖｅｒｆｌｉｅｓ ｉｎ ｄｉａｎｔｈｕｍ Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｔａｘｏｎｏｍｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ 植 ＬｉＡꎬＬｕｏＹＢꎬＧｅＳꎬ２００２ｂ.Ａｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙｓｔｕｄｙｏｎｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｇｅ￣ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [Ｊ]. ( Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ 物分类学报 ４５ ｎｅｔｉｃｓ ｏｆ ａｎ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｏｒｃｈｉｄ ( ) )ꎬ :５５１—５６０ ＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌＧｅｎｅｔｉｃｓ ４０ ＴｈｅＭａｔｈｅｍａｔｉｃａｌＴｈｅｏｒｙｏｆＣｏｍｍｕ￣ ｆｒｏｍｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎＣｈｉｎａ [Ｊ]. ꎬ :１９５— ＳｈａｎｎｏｎＣＥꎬＷｅａｖｅｒＷꎬ１９４９. ｎｉｃａｔｉｏｎ ２０１ [Ｍ]. Ｕｒｂａｎａ:ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＩｌｌｉｎｏｉｓＰｒｅｓｓꎬＩＬꎬＵＳＡ Ｌｉ Ｇꎬ Ｑｕｉｒｏｓ ＣＦꎬ ２００１. Ｓｅｑｕｅｎｃｅ￣ｒｅｌａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ ＳｌａｔｋｉｎＭꎬＢａｒｔｏｎＮＨꎬ１９８９.Ａｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｔｈｒｅｅｉｎｄｉｒｅｃｔｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ４３ (ＳＲＡＰ)ꎬ ａ ｎｅｗ ｍａｒｋｅｒ ｓｙｓｔｅｍ ｂａｓｅｄ ｏｎ ａ ｓｉｍｐｌｅ ＰＣＲ ｒｅａｃ￣ ｆｏｒ ｅｓｔｉｍａｔｉｎｇ ａｖｅｒａｇｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ [Ｊ]. ꎬ : Ｂｒａｓｓｉｃａ ｔｉｏｎ: ｉｔｓ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｔｏ ｍａｐｐｉｎｇ ａｎｄ ｇｅｎｅ ｔａｇｇｉｎｇ ｉｎ １３４９—１３６８ ＴｈｅｏｒｅｔｉｃａｌａｎｄＡｐｐｌｉｅｄＧｅｎｅｔｉｃｓ １０３ [Ｊ]. ꎬ :４５５—４６１ ＳｍｉｔｈＪＬꎬＨｕｎｔｅｒＫＬꎬＨｕｎｔｅｒＲＢꎬ２００２.Ｇｅｎｅｔｉｃｖａｒｉａｔｉｏｎｉｎｔｈｅｔｅｒ￣ Ｓｏｎｎｅｒａ￣ Ｔｉｐｕｌａｒｉａｄｉｓｃｏｌｏｒ ＳｏｕｔｈｅａｓｔｅｒｎＮａｔｕｒａｌｉｓｔ １ ＬｉＨＳꎬＣｈｅｎＧＺꎬ２００４.Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆｍａｎｇｒｏｖｅｐｌａｎｔ ｒｅｓｔｒｉａｌｏｒｃｈｉｄ [Ｊ]. ꎬ : ｔｉａｃａｓｅｏｌａｒｉｓ Ａｃｔａ ｉｎＨａｉｎａｎＩｓｌａｎｄｂａｓｅｄｏｎＩＳＳＲａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ]. １７—２６ ＥｃｏｌｏｇｉｃａＳｉｎｉｃａ ２４ ｅｔａｌ ꎬ :１６５６—１６６２ ＳｗａｍｙＫＫꎬＫｕｍａｒＨＮＫꎬＲａｍａｋｒｉｓｈｎａＴＭ .ꎬ２００４. Ｓｔｕｄｉｅｓｏｎ ＬｉａｏＹＪꎬＴｓａｉＹＣꎬＳｕｎＹＷꎬ２０１１.Ｉｎｖｉｔｒｏｓｈｏｏｔｉｎｄｕｃｔｉｏｎａｎｄｐｌａｎｔ ｓｅｅｄｍｏｒｐｈｏｍｅｔｒｙｏｆｅｐｉｐｈｙｔｉｃｏｒｃｈｉｄｓｆｒｏｍｗｅｓｔｅｒｎｇｈａｔｓｏｆｋａｒ￣ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｉｎ Ｔａｉｗａｎｉａ ４９ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｆｒｏｍｆｌｏｗｅｒｂｕｄｓ ｉｎ ｏｒｃｈｉｄｓ [Ｊ]. ｎａｔａｋａ [Ｊ]. ꎬ :１２４—１４０ ｖｉｔｒｏＣｅｌｌｕｌａｒ＆ＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌＢｉｏｌｏｇｙ ４７ ꎬ :７０２—７０９ ＳｗａｍｙＫＫꎬＫｕｍａｒＨＮＫꎬＲａｍａｓｗａｍｙＳＮꎬ２００７.Ｓｔｕｄｉｅｓｏｎｓｅｅｄｍｏｒ￣ ｅｔａｌ Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ Ｐｈｙｔｏｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ５７ Ｌｉｕ ＨꎬＦｅｎｇＣＬꎬＬｕｏＹＢ .ꎬ２０１０.Ｐｏｔｅｎｔｉａｌｃｈａｌｌｅｎｇｅｓｏｆｃｌｉｍａｔｅ ｐｈｏｍｅｔｒｙ ｏｆ ｓｐｅｃｉｅｓ [Ｊ]. ꎬ : ｃｈａｎｇｅｔｏ ｏｒｃｈｉｄ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｉｎ ａ ｗｉｌｄ ｏｒｃｈｉｄ ｈｏｔｓｐｏｔ ｉｎ ｓｏｕｔｈ￣ ３３—４３ ＢｏｔａｎｙＲｅｖｉｅｗ ７６ ｅｔａｌ ｗｅｓｔｅｒｎＣｈｉｎａ [Ｊ]. ꎬ :１７４—１９２ ＴｓｉＺＨꎬＬｕｏＹＢ. ＣｒｉｂｂＰＪ .ꎬ１９９９. Ａ ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｒｅｐｏｒｔ ｏｎ ｔｈｅ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉ￣ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ＬｉｕＺＪꎬＺｈａｎｇＪＹꎬＲｕＺＺꎬ２００４.Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｂｉｏｌｏｇｙｏｆ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓｉｚｅꎬｅｃｏｌｏｇｙꎬａｎｄｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｓｔａｔｕｓｏｆ ｌｕｍｐｕｒｐｕｒａｔｕｍ Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｉｅｎｃｅ １２ Ｌｉｎｄｌｙａｎａ ｔｈｅ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [Ｊ]. ꎬ : ｓｐｅｃｉｅｓ(Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａ [Ｊ]. : ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＪｏｕｒｎａｌｏｆｔｈｅＡｍｅｒｉｃａｎＯｒｃｈｉｄ １４ ５０９—５１６ ꎬ :１２—２３ ＬｉｕＺＪꎬＬｉｕＫＷꎬＣｈｅｎＬＪꎬ２００６.Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｅｃｏｌｏｇｙｏｆｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ Ｗａｌｌａｃｅ ＬＥꎬ ２００３ꎬ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ａｌｌｏｐｏｌｙｐｌｏｉｄ ｓｐｅｃｉａｔｉｏｎ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ａｒｍｅｎｉａｃｕｍ Ａｃｔａ Ｐｌａｔａｎｔｈｅｒａ ｈｕｒｏｎｅｎｓｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [Ｊ]. ａｎｄ ｒｅｃｕｒｒｅｎｔ ｏｒｉｇｉｎｓ ｉｎ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ＥｃｏｌｏｇｉｃａＳｉｎｉｃａ ２６ ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅｓ １６４ ꎬ :２７９１—２８００ [Ｊ]. ꎬ :９０７—９１６ ｅｔａｌ ＴｈｅＧｅｎｕｓＰａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍｉｎ ｅｔａｌ ＬｉｕＺＪꎬＣｈｅｎＳＣꎬＣｈｅｎＬＪ .ꎬ２００９. ＷａｎｇＨＺꎬＷｕＺＸꎬＬｕＪＪ .ꎬ２００９. Ｍｏｌｅｃｕｌａｒｄｉｖｅｒｓｉｔｙａｎｄ ｒｅｌａ￣ Ｃｈｉｎａ Ｃｙｍｂｉｄｉｕｍ ｇｏｅｒｉｎｇｉｉ [Ｍ]. Ｂｅｉｊｉｎｇ:ＳｃｉｅｎｃｅＰｒｅｓｓꎬ４—１２ ｔｉｏｎｓｈｉｐｓａｍｏｎｇ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｉｎｔｅｒ￣ Ｇｅｎｅｔｉｃａ １３６ ＬｕａｎＳＳꎬＣｈｉａｎｇＴＹꎬ Ｇｏｎｇ Ｘꎬ２００６. Ｈｉｇｈ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｖｓ. ｌｏｗ ｓｉｍｐｌｅｓｅｑｕｅｎｃｅｒｅｐｅａｔ (ＩＳＳＲ) ｍａｒｋｅｒｓ [Ｊ]. ꎬ : Ｎｏｕｅｌｉａ ｉｎｓｉｇｎｉｓ ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｎ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)ꎬ ａ ｎａｒ￣ ３９１—３９９ ｒｏｗｌｙｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄａｎｄｅｎｄｅｍｉｃｓｐｅｃｉｅｓｉｎＣｈｉｎａꎬｒｅｖｅａｌｅｄｂｙＩＳ￣ ＷｏｎｇＫＣꎬＳｕｎ Ｍꎬ １９９９. Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｇｅ￣ ＡｎｎａｌｓｏｆＢｏｔａｎｙ ９８ Ｇｏｏｄｙｅｒａｐｒｏｃｅｒａ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒ￣ ＳＲｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ [Ｊ]. ꎬ :５８３—５８９ ｎｅｔｉｃｓｏｆ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [Ｊ]. ｎａｌｏｆＢｏｔａｎｙ ８６ ＬｕｏＹＢꎬＪｉａＪＳꎬＷａｎｇＣＬꎬ２００３.Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｓｔｒａｔｅｇｙａｎｄｐｏｔｅｎｔｉａｌ ꎬ :１４０６—１４１３ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｉ￣ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｄｖａｎｔａｇｅｓｏｆｔｈｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ [Ｊ]. ＷｒｉｇｈｔＳꎬ １９３１. Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｉｎ Ｍｅｎｄｅｌｉａｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ [Ｊ]. ꎬ ｅｎｃｅ １１ １６ ꎬ (６):４９１—４９８ :９７—１５９ Ｔｏｏｌｓ Ｆｏｒ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ａｎａｌｙｓｉｓ ＴＦＰＧＡ ｅｔａｌ ＭｉｌｌｅｒＭＰꎬ １９９７. ( ) ＹａｎＴＦꎬＺｈｏｕＦＪꎬＹａｎＸＦ .ꎬ１９９９. Ｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｐｏｐｕ￣ １３ ＡＷｉｎｄｏｗｓＰｒｏｇｒａｍｆｏｒｔｈｅＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＡｌｌｏｚｙｍｅａｎｄＭｏｌｅｃｕ￣ Ｒｈｏｄｉｏｌａａｎｇｕｓｔａ ＢｕｌｌｅｔｉｎｏｆＢｏｔａｎｉ￣ : ｌａｔｉｏｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆ [Ｊ]. ｌａｒＰｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄａｔａ ｃａｌＲｅｓｅａｒｃｈ １９ [Ｍ]. Ｆｌａｇｓｔａｆｆ: Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｂｉｏ￣ ꎬ :１８９—１９４ ｌｏｇｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＮｏｒｔｈｅｒｎＡｒｉｚｏｎａＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＡＺꎬＵＳＡ ＺｅｎｇＳＧꎬ Ｔｉａｎ ＲＸꎬ Ｃｈｅｎ ＺＬꎬ ２０１０ꎬ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｏｎ ｃｒｏｓｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｔｒｏｐｉｃａｌ ａｎｄ Ｓｕｂ￣ ＮｅｉＭꎬ １９７８. Ｅｓｔｉｍａｔｉｏｎ ｏｆ ａｖｅｒａｇｅ ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｓｉｔｙ ａｎｄ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓ￣ ｂｒｅｅｄｉｎｇｏｆ [Ｊ]. Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ８９ ｔｒｏｐｉｃａｌＢｏｔａｎｙ １８ ｔａｎｃｅ ｆｒｏｍ ａ ｓｍａｌｌ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ [Ｊ]. ꎬ : ꎬ :４５９—４６８ ５８３—５９０ ＺｈａｎｇＪＪꎬ２０１２.ＥｍｂｒｙｏＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄＳｅｅｄＭｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｆＰａｐｈｉｏ￣ ＮｙｂｏｍＨꎬ２００４.ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｎｕｃｌｅａｒＤＮＡｍａｒｋｅｒｓｆｏｒｅｓ￣ ｐｅｄｉｌｕｍꎬＯｒｃｈｉｄａｃｅａｅ(ＭＳｄｅｇｒｅｅ)[Ｄ].Ｋｕｎｍｉｎｇ:ＫｕｎｍｉｎｇＩｎ￣ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｔｉｍａｔｉｎｇｉｎｔｒａｓｐｅｃｉｆｉｃ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ [Ｊ]. ｓｔｉｔｕｔｅｏｆＢｏｔａｎｙꎬＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＣｈｉｎａꎬ２２—３２ Ｅｃｏｌｏｇｙ １３ ꎬ :１１４３—１１５５ ＺｉｅｔｋｉｅｗｉｃｚＥꎬ Ｆａｆａｌｓｋｉ Ａꎬ Ｌａｂｕｄａ Ｄꎬ １９９４. Ｇｅｎｏｍｅ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ ＰｅａｋａｌｌＲＯＤꎬＳｍｏｕｓｅ ＰＥꎬ ２００６. ＧＥＮＡＬＥＸ ６: ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ ｂｙｓｉｍｐｌｅｓｅｑｕｅｎｃｅｒｅｐｅａｔ (ＳＳＲ)￣ａｎｃｈｏｒｅｄ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅ￣ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ２０ Ｅｘｃｅｌ.Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｇｅｎｅｔｉｃｓｏｆｔｗａｒｅｆｏｒｔｅａｃｈｉｎｇａｎｄｒｅｓｅａｒｃｈ [Ｊ]. ａｃｔｉｏｎａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ [Ｊ]. ꎬ :１７６—１８３
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