Etude phytochimique et activités biologiques de Diplotaxis sp.: application à l’étude des cellules souches coliques pathologiques Imen Nasri To cite this version: Imen Nasri. Etude phytochimique et activités biologiques de Diplotaxis sp.: application à l’étude des cellules souches coliques pathologiques. Cancer. Université Paul Sabatier - Toulouse III, 2016. Français. NNT: 2016TOU30155. tel-01578064 HAL Id: tel-01578064 https://theses.hal.science/tel-01578064 Submitted on 28 Aug 2017 HAL is a multi-disciplinary open access L’archive ouverte pluridisciplinaire HAL, est archive for the deposit and dissemination of sci- destinée au dépôt et à la diffusion de documents entific research documents, whether they are pub- scientifiques de niveau recherche, publiés ou non, lished or not. 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Raoudha Mezghani-Jarraya Université de Sfax DIRECTRICE Dr. Claire Racaud-Sultan Université de Toulouse DIRECTRICE Année Universitaire : 2015-2016 Dédicaces Je dédie ce travail À mes très chers parents Lamine et Razika qui m’ont entourée, tout le long de ma vie, de leur amour et leur soutien et dont les sacrifices qu'ils ont consentis m'ont permis d'atteindre ce niveau À mon cher époux Jamel pour son soutien et son appui moral tout le long de mon travail À mon petit ange Louay pour te dire que tu resteras pour toujours le rayon de soleil qui égaye ma vie Je t'aime mon bébé et je te souhaite tout le bonheur du monde À mes frères, mes sœurs et leurs petites familles pour leur assistance et leur amour fraternel et leur chaleur À toute ma famille « NASRI ET HAMDI» À tous ceux qui me sont chers. Imen NASRI Remerciements Cette thèse a été réalisée sous cotutelle dans le Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles (UR11- ES74) de la Faculté des Sciences de Sfax-Tunisie et à l’INSERM de Toulouse-France (U1043-CPTP, Centre de Physiopathologie de Toulouse Purpan, puis U1220-IRSD, Institut de Recherche en Santé Digestive), dans le cadre d’un partenariat PHC UTIQUE (projet N°CMCU12G0821, «Plantes médicinales à effets anti- inflammatoires et pré-cancérisation des cellules souches intestinales»). J’adresse tout d’abord mes plus vifs remerciements au Directeur du Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles UR11- ES74, Professeur Ridha BEN SALEM, pour ses encouragements et ses qualités humaines, et à la Directrice de l’Institut de Recherche en Santé Digestive, Docteur Nathalie VERGNOLLE, pour m’avoir accueillie dans son laboratoire durant trois stages qui m'ont donné beaucoup d’expérience et m’ont aidée à trouver ma voie pour le reste de mes études. Je tiens à remercier tout particulièrement mes Directrices de thèse, Mme Raoudha MEZGHANI-JARRAYA, Professeur à la Faculté des Sciences de Sfax, et Mme Claire RACAUD-SULTAN, Chargée de recherches à l’INSERM, pour m’avoir encadrée, formée tout au long de mon parcours. Je tiens vivement à les remercier pour leur disponibilité, leurs conseils judicieux et leurs efforts déployés pour me fournir les ressources nécessaires pour mon travail en chimie et en biologie. Qu’elles trouvent ici l’expression de mes sincères remerciements et ma profonde gratitude. Je remercie également tous les membres du Jury pour leur disponibilité en acceptant de juger mon travail: Mr Mohamed DAMAK, Professeur Emérite, qui m’a honorée en acceptant de présider le Jury de ma thèse. Mr Fakher CHABCHOUB, Professeur à la Faculté des Sciences de Sfax, et Mme Hélène TALARMIN, Professeur à l’Université Bretagne Loire, merci également d’avoir accepté de participer à ce jury de thèse en tant que rapporteurs. Merci de m'avoir consacré votre temps pour évaluer mon travail. Mes sincères remerciements s’adressent également à Mr Nicolas FABRE, Directeur du Laboratoire de Pharmacochimie et Pharmacologie pour le Développement PHARMA- DEV UMR 152 à Toulouse, qui a accepté d’examiner mon rapport et m’a aidée durant mes travaux en chimie à Toulouse. Dans le cadre de ma thèse, j’ai eu la chance et le plaisir de travailler et de discuter avec différentes personnes dans les laboratoires en Tunisie et en France. Je voudrais les remercier de l’aide qu’elles m’ont apportée au cours de ce travail: Mr Younes AYADI à la Faculté des Sciences de Sfax et Mme Caroline TOPPAN du service commun de RMN de Toulouse, pour les analyses de RMN. Mme Isabelle FABING à l’Institut de Chimie de Toulouse pour les analyses HPLC. Mr Rachid CHAWECH de notre laboratoire (UR11- ES74) et Mlle Cynthia GIRARDI du Laboratoire de Pharmacochimie et Pharmacologie pour le Développement à Toulouse pour leur gentillesse et leur aide. Mr Slim TOUNSI, Directeur du Laboratoire des Biopesticides au Centre de Biotechnologie de Sfax, Mr Mohamed TRIGUI, Maître de conférences ainsi que Madame Dhekra MHALLA et les membres de ce laboratoire, pour la réalisation des tests microbiologiques. Mme Sophie ALLART et Mme Astrid CANIVET du Plateau Technique d’Imagerie Cellulaire du Centre de Physiopathologie de Toulouse-Purpan pour le traitement et l’analyse des images. Tous les membres du Laboratoire de Chimie des Substances Naturelles et les membres de l’Institut de Recherche en Santé Digestive pour leurs amitié, gentillesse et soutien moral. Que tous ceux que je n’ai pas cités et qui m’ont aidée tout au long de ces années, soient assurés de ma profonde et sincère reconnaissance. Résumé Les plantes médicinales Diplotaxis harra et Diplotaxis simplex occupent une place importante dans la pharmacopée traditionnelle grâce à leurs compositions variées en métabolites secondaires tels que les flavonoïdes. Ces derniers jouent un rôle important dans plusieurs activités biologiques, notamment anti-inflammatoires et anti- cancéreuses. Dans ce contexte, et à la recherche de molécules bioactives dans D. harra et D. simplex, nous avons mis au point un nouveau modèle d’étude in vitro des cellules souches à l’origine des pathologies inflammatoires et cancéreuses coliques où leur survie dépend de l’activation de la Glycogène Synthase Kinase 3(GSK3en aval du récepteur de protéases inflammatoires PAR . Ce modèle a permis la purification 2 bioguidée de glucoflavonoïdes à partir d’un extrait méthanolique des fleurs de D. harra capables d’inhiber GSK3 via la voie PKC. Ainsi, l’Isorhamnétine-3,7-di-O- glucoside s’est révélé cytotoxique vis à vis des cellules inflammatoires ou cancéreuses coliques tout en épargnant les cellules normales. D’autre part, en raison de l’intérêt grandissant porté aux fractions volatiles en thérapeutique, nous avons étudié les compositions chimiques et les activités antioxydantes des fractions volatiles des feuilles et des fleurs de D. simplex. En se basant sur la technique chromatographique en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse (GC-MS), nous avons montré que les deux fractions volatiles contiennent des quantités importantes de composés soufrés/azotés, parmi lesquels le 5- methylthiopentanenitrile et le 1-isothiocyanatobutane pourraient être impliqués dans l’effet antioxydant des fleurs de D. simplex. En conclusion, nos travaux ont permis de révéler l’axe PAR /GSK3 comme une 2 nouvelle voie de survie des cellules souches coliques et l’intérêt thérapeutique des glucoflavonoïdes et des fractions volatiles de l’espèce Diplotaxis. 1 Abstract The medicinal plants Diplotaxis harra and Diplotaxis simplex occupy an important place in traditional medicine due to their varied compositions in secondary metabolites such as flavonoids. Flavonoids play an important role in many biological activities, including inflammation and cancer. In this context and in search of bioactive molecules in D. harra and D. simplex, we have developed a new study model, in vitro, where colonic stem cells causing inflammatory diseases and colorectal cancer survive through the activation of Glycogen Synthase Kinase 3 (GSK3) downstream of inflammatory proteases PAR 2 receptor. This model allowed the bio-guided purification of glucoflavonoids from a methanol extract of D. harra flowers able to inhibit GSK3 via a PKC-dependent pathway. Thus, isorhamnetin-3,7-di-O-glucoside was found to be cytotoxic against inflammatory or colon cancer cells while sparing normal cells. On the other hand, due to the growing interest in therapeutic volatile fractions, we studied the chemical composition and antioxidant activity of volatile fractions of leaves and flowers of D. simplex. Based on the gas chromatography mass spectrometry technique (GC-MS), we have shown that both volatile fractions contain significant amounts of sulfur/nitrogen compounds, including 5-methylthiopentanenitrile and 1-isothiocyanatobutane, which might be involved in the antioxidant effect of flowers from D. simplex. In conclusion, our work revealed the axis PAR /GSK3 as a new survival pathway for 2 colon stem cells and the therapeutic value of glucoflavonoids and volatile fractions of Diplotaxis species. 2 Table des matières Résumé………………………………………………………………………………………………………………………………………………….… 1 Abstract…………………………………………………………………………………………………………………………………………………... 2 Tables des matières …………………………………………………………………………………………………………………………….….. 3 Abréviations………………………………………………………………………………………………………………………………………….…. 7 Liste des figures…………………………………………………………………………………………………………………………………….… 9 Liste de tableaux……………………………………………………………………………………………………………………………………... 12 Introduction………………………………………………………………………………………………………………………………………….…. 14 ÉTUDE BIBLIGRAPHIQUE I- SPECIFICITES BOTANIQUES ET PROPRIETES PHARMACOLOGIQUES DE D. SIMPLEX ET D. HARRA……….…. 17 I-1- La famille des Crucifères ou Brassicaceae………………………………………………………………………………………... 17 I-2- Le genre Diplotaxis……………………………………………………………………………………………………………………….…. 17 I-3- L’esp(cid:287)(cid:272)e Diplotaxis simplex………………………………………………………………………………………………………….….. 18 I-3-1- Classification……………………………………………………………………………………………………………………………… 18 I-3-2- Description botanique………………………………………………………………………………………………………………. 18 I-3-3- Composition chimique………………………………………………………………………………………………………………. 18 I-3-4- Propriétés pharmacologiques……………………………………………………………………………………………………. 21 I-4- L’esp(cid:287)(cid:272)e Diplotaxis harra………………………………………………………………………………………………………………… 21 I-4-1- Classification……………………………………………………………………………………………………………………………… 21 I-4-2- Description botanique………………………………………………………………………………………………………………. 21 I-4-3-Composition chimique……………………………………………………………………………………………………………….. 22 I-4-4- Utilisations traditionnelles………………………………………………………………………………………………………… 26 II- GENERALITES SUR LES HUILES ESSENTIELLES……………………………………………………………………………………….. 26 II-1- Définition……………………………………………………………………………………………………………………………………….. 26 II-2- Composition chimique……………………………………………………………………………………………………………………. 27 II-3- Propriétés pharmacologiques…………………………………………………………………………………………………………. 27 III- COMPOSES NATURELS ET CELLULES SOUCHES PATHOLOGIQUES ………………………………………………………. 27 III-1- Cellules souches pathologiques et ciblage par des composés naturels …………………………………………. 27 III-2- Les flavo(cid:374)oïdes et la voie GSK3β da(cid:374)s les (cid:272)ellules sou(cid:272)hes (cid:272)a(cid:374)(cid:272)(cid:288)(cid:396)euses………………………………………… 29 III-3- Les composés naturels dans les pathologies colorectales…………………………………………………………….. 34 3 . Objectif des recherches 36 MATÉRIELS ET MÉTHODES ………………………………………………………………………………….... I- MATERIEL VEGETAL………………………………………………………………………………………………………………………………. 38 I-1- Collecte et identification du matériel végétal………………………………………………………………………………….. 38 I-2-Extraction par macération………………………………………………………………………………………………………………… 38 I-3-Extraction des fractions volatiles par hydrodistillation……………………………………………………………………… 41 II- CARACTERISATION PHYTOCHIMIQUE………………………………………………………………………………………………….. 42 II-1- Tests phytochimiques préliminaires…………………………………………………………………………………………….…. 42 II-2- Dosage des phénols totaux…………………………………………………………………………………………………….………. 43 II-2-1- Principe……………………………………………………………………………………………………………………………………. 43 II-2-2- Mode opératoire……………………………………………………………………………………………………………………… 43 II-3- Dosage des flavonoïdes totaux………………………………………………………………………………………………………. 44 II-3-1- Principe……………………………………………………………………………………………………………………………………. 44 II-3-2- Mode opératoire……………………………………………………………………………………………………………………... 44 III- METHODES CHROMATOGRAPHIQUES………………………………………………………………………………………….….… 44 III-1- Méthodes chromatographiques analytiques………………………………………………………………………….……… 44 III-1-1 La chromatographie sur couche mince (CCM) …………………………………………………………………………. 44 III-1-2 La Chromatographie Liquide Ultra haute Pression (UHPLC) …………………………………………………….. 45 III-1-3 Chromatographie en phase Gazeuse couplée à la Spectrométrie de Masse (GC\MS) ……………… 45 III-2- Méthodes chromatographiques préparatives……………………………………………………………….……………… 46 III-2-1 Chromatographie sur colonne ouverte……………………………………………………………………………………. 46 III-2-2 Chromatographie liquide à haute performance semi-préparative (HPLC semi-préparative) …… 46 III-2-3 Chromatographie sur couche épaisse préparative…………………………………………………………………… 47 IV- TECHNIQUES SPECTROSCOPIQUES……………………………………………………………………………………………………. 47 IV-1- Spectrométrie de masse (SM) …………………………………………………………………………………………………….. 47 IV-2- Résonance magnétique nucléaire (RMN) ……………………………………………………………………………………. 47 V- ACTIVITES BIOLOGIQUES…………………………………………………………………………………………………………………… 49 V-1- Activité de piégeage de radicaux…………………………………………………………………………………………………. 49 V-2- Activité antibactérienne……………………………………………………………………………………………………………… 51 V-2-1- Microorganismes………………………………………………………………………………………………………………….. 51 4
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