昆 虫 学 报 !"#$%&#’(’)’*+"$,+&+"$,!"#$%&&’,(() *):*&)+*&’ ,--.&/(/0*%1* """"""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""" 嗜线虫致病杆菌血腔毒素 对大蜡螟幼虫 !"#$ 体内酶活性和中肠组织的影响 杨 君,王勤英!,宋 萍,南宫自艳,崔 龙 (河北农业大学植物保护学院,河北省农作物病虫害生物防治工程技术研究中心,河北保定 &H)&&)) 摘要:嗜线虫致病杆菌 -.&’/0$1234&.($#’50+)$在侵入到寄主昆虫血腔后能够成功地逃避或抑制寄主昆 虫的免疫反应并快速杀死昆虫。为深入了解嗜线虫致病杆菌的杀虫机理,明确关键的致病因子,作者应 用盐析和制备型非变性凝胶电泳等方法,从嗜线虫致病杆菌OP2)&菌株的细胞内分离纯化了一种新的 杀虫蛋白———GE/&,该蛋白对大蜡螟 6$))./+$ (.))’&.))$具有高血腔注射活性,对大蜡螟(龄幼虫的QR (& 为*’S(/ #:T头。本文检测了该毒素对大蜡螟幼虫的致病特性,注射GE/&毒素后,大蜡螟幼虫表现出兴 奋和痉挛等症状,当以不低于(H&U&S&%)#:T头的剂量注射GE/&,大蜡螟幼虫均在%& 57#内死亡,但试虫 的体色、血淋巴的颜色以及血细胞的形态没有发生明显的变化。对大蜡螟体内酶活性的测定结果显示, 在注射QR 剂量的GE/&蛋白后,试虫体内羧酸酯酶和乙酰胆碱酯酶活力都明显的高于对照(7V&S&(), (& 而酚氧化酶活力显著低于对照(7V&S&()。对大蜡螟幼虫中肠的组织病理学研究显示:这种/% WR6蛋 白能够破坏试虫的中肠组织,导致其肠壁细胞出现排列紊乱、脱落和围食膜消失。据此推测,GE/&与嗜 线虫致病杆菌对寄主昆虫的免疫抑制有关,寄主中肠组织可能是其作用靶标之一。 关键词:嗜线虫致病杆菌;血腔毒素;酶活力;大蜡螟;中肠 中图分类号:X1*( 文献标识码:? 文章编号:&/(/0*%1(* %&&’)&*0&*&)0&’ %&’()*&+* ,’ -.* ./*0,+,*( -,12& ( !"#$ ) ’3,0 !"#$%&’()*+ #",’-$.&/0’ ,& *&450* /+-262-2*7 /&8 0289)- -277)*7 2& 1’00"%/’ ,"00$#"00’(:*"28,"-*3/:;53/(28/*)(/36/* Y?.Z !"#,[?.Z X7#0Y7#:!,-\.Z ]7#:,.?.Z\.Z ^70Y6#,3_, Q>#:(P7>=>#@B>8 3$#@B$ >C ]86#@ R7D$6D$D 6#F ]86#@ ]$D@D >C O$‘$7 ]B>N7#=$,3>88$:$ >C ]86#@ ]B>@$=@7>#,?:B7="8@"B68 _#7N$BD7@9 >C O$‘$7,P6>F7#:,O$‘$7 &H)&&),3A7#6) <=7-3/+-:-.&’/0$1234&.($#’50+)$ 7D6# 7#D$=@ E6@A>:$# @A6@ >N$B=>5$D 755"#$ B$DE>#D$ >C 7#D$=@ A>D@ 6#F W788D 6 K7F$ B6#:$ >C 7#D$=@D< G> 6FFB$DD @A$ 8$@A68 5$=A6#7D5D >C @A$ ‘6=@$B7"5,K$ 7D>86@$F 6#F =A6B6=@$B7a$F @A$ 7#D$=@7=7F68 @>J7#D CB>5 -< &.($#’50+)$ OP2)& D@B67#< ? #$K EB>@$7# GE/& K7@A A7:A 7#b$=@6‘8$ A6$5>=>$8 6=@7N7@9 @> 6$))./+$ (.))’&.))$ 86BN6$ K6D >‘@67#$F "D7#: 5$@A>FD D"=A 6D D68@7#: >"@ 6#F #6@7N$0]?Z4 CB>5 @A$ =$88D >C -< &.($#’50+)$ OP2)&< GA$ 7#b$=@6‘8$ A$5>=>$87= E>@$#=9(QR )>C GE/& K6D *’S(/ #:T86BN6 6:67#D@ (@A07#D@6B 86BN6$ >C 6< (& (.))’&.))$< ]>D@ 7#b$=@7># >C GE/&,@A$ 86BN6$ =$6D$F C$$F7#: 685>D@ 755$F76@$89 6#F DA>K$F $J=7@$5$#@ 6#F =>#N"8D7>#< GA$ 86BN6$ 7#b$=@$F K7@A @A$ F>D$ >C 5>B$ @A6#(H&U&S&%)#:T86BN6 >C GE/& 688 F7$F K7@A7# %& 57#< GA$ =>8>B >C ‘>F9 6#F A$5>895EA >C GE/& @B$6@$F 86BN6$ F7F #>@ =A6#:$ F7D@7#=@89< GA$ A$5>=9@$D >C GE/&0@B$6@$F 86BN6$ 68D> K$B$ #>@ F$D@B>9$F< GA$ 6=@7N7@9 >C @A$ =6B‘>J98$D@$B6D$(36B4)6#F @A$ 6=$@98=A>87#$D@$B6D$(?=A4)>C 6< (.))’&.))$ 86BN6$ 7#b$=@$F K7@A @A$ QR F>D$ >C GE/& K$B$ >‘N7>"D89 A7:A$B @A6# @A6@ >C ]P-0=>#@B>8(7 V &S&(),B$DE$=@7N$89< (& 基金项目:国家自然科学基金项目(2&/&&%1*);河北省自然科学基金项目(3%&&*&&&//2);河北农业大学重点基金项目(1’)*) 作者简介:杨君,男,)1’)年生,河北人,硕士研究生,研究方向为昆虫病原微生物,405678:96#:%%)’);)*2<=>5 !通讯作者?"@A>BC>B=>BB$DE>#F$#=$,G$8<:’*02)%0H(%’)(&;I6J:’*02)%0H(%’)*&;405678:KL7#97#:;96A>><=>5<=# 收稿日期 M$=$7N$F:%&&H0))0)/;接受日期 ?==$E@$F:%&&’0&(0)/ U8G 昆虫学报 54*(6’*&#&%&7-4(3-’-4( ?M卷 !"#$%$&,’"()’*$+"(",-./0$(12)/34-%-4) "5 4*$ 6’789-+:$34$. (/&%/$ #/0 ;/&<$.() ("#$& 4*/+ 4*/4 "5 4*$ 3"+4&"((! = 8>8?)@ 6*$ 04A.) "+ 4*$ *-04"’/4*"("B) "5 4*$ ;-.BA4 "5 "@ #$%%&’$%%( -+.-3/4$. 4*/4 6’78 .$04&")$. 4*$ $’-4*$(-A; /+. 4*$ ’$&-4&"’*-3 ;$;C&/+$ "5 4*$ ;-.BA4@ 6*$0$ &$0A(40 0ABB$04 4*/46’78 #/0(-<$() 4"C$/00"3-/4$.#-4* 4*$ -;;A+"0A’’&$00-"+C) )@ ’$#(*&+,-%( 4" *"040@ 6*$ ;-.BA4 4-00A$0 "5 4*$ *"04 ;/) C$ "+$ "5 4*$ /34-+B 4/&B$40 "5 6’78@ !"# $%&’(:)$’&.,(/012 ’$#(*&+,-%(;*/$;"3"$( 4",-+;$+D);$ /34-%-4);"(%%$.-( #$%%&’$%%(; ;-.BA4 虽然各种昆虫都拥有体液免疫和细胞免疫的保 共生菌。前期研究已经从其细胞内分离纯化了G种 护(E/%-+$ /+. F4&/+.,G88G),但还是有各种微生物能 杀虫蛋白,其中一种分子量约为U8 <T/的蛋白对大 够成功地对付这种先天免疫反应,成功地侵染寄主 蜡螟具有较高血腔注射活性(王勤英等,G88?)。在 昆虫(F*&$04*/ /+. H-;,G88I)。嗜线虫致病杆菌 对该菌株的进一步研究中,又从其细胞内纯化了一 )$’&.,(/012 ’$#(*&+,-%( 属 肠 杆 菌 科(J+4$&"C/39 种新的对大蜡螟具有高血腔注射活性的蛋白,其对 4$&-/3$/$),革兰氏阴性细菌,与小卷蛾斯氏线虫 ?龄大蜡螟幼虫的血腔注射致死中量(ET )为US>?7 ?8 3*$-’$.’$#( 4(.+&4(+2($ 共生(K<*A&04 /+. L"$;/&$, +BV头。该蛋白分子量约为 7G <T/,命名为 6’78 MNN8)。侵染期的昆虫病原线虫能够将携带的共生 (6",-+ ’&"4$-+ 78)。6’78 蛋白编码 PUS 个氨基酸残 菌释放到靶标昆虫血腔内,并在短期内杀死寄主昆 基(O$+L/+< 登录号:KLWUS7MS)(杨君等,G88S),与 虫。在昆虫病原线虫9共生菌复合体的杀虫过程中, 已知6,’78 蛋白(KLLGN7S8)存在 G 个氨基酸差异, 共生菌扮演着重要的角色,它们能够在靶标昆虫血 本文主要针对这种新蛋白的杀虫机理进行初步 腔内繁殖,分泌各种毒素,抑制其免疫反应,最终使 探讨。 靶标昆虫患败血症死亡(1/&< /+. H-;,G888; 2#A/;/,G88M)。 ) 材料与方法 昆虫病原线虫9共生菌复合体具有广泛的寄主 范围,已经被用来防治各种地下害虫及钻蛀类害虫 )*) 供试菌株和试虫 (H/)/ /+. O/AB($&,MNNP)。作为杀虫的主导因子,共 嗜线虫致病杆菌 !LPM8 菌株、? 龄大蜡螟 生菌产生多种与杀虫活性相关的毒素,但这些毒素 "(%%$.-(#$%%&’$%%( 幼虫(体重 8>G8 X 8>G? B)均由河 在昆虫病原线虫9共生菌复合体杀虫过程中的具体 北农业大学害虫生物防治实验室提供。 作用还不清楚。对嗜线虫致病杆菌杀虫毒素的不断 )*+ 胞内蛋白提取 研究,将有助于揭示昆虫病原线虫共生菌的杀虫机 参照王勤英等(G88?)的方法。将培养好的菌液 理,为新的微生物杀虫资源的开发利用提供理论依 在7Y,M8888 & V;-+离心P8 ;-+,所得细胞沉淀加适 据。现在已从不同的昆虫病原线虫共生菌中分离到 量的磷酸缓冲液(’*"0’*/4$ CA55$& 0"(A4-"+,1LF),7Y 了多种具有杀虫活性的物质,根据其作用方式可分 S888 &V;-+离心洗涤并用 1LF 重新悬浮,经超声波 为口服活性和血腔注射活性两类,具有血腔活性的 破碎和离心后,上清液再用8>7? ; 滤膜过滤,最后 ! 物质被认为在杀虫过程中起主要作用(55&$+3*9 由Z-((-’"&$ P <T/ Q$+4&-3"+ [Z9P离心超滤管浓缩获 Q"+04/+4 $* (%@,G88I)。目前,有关昆虫病原线虫共 得胞内蛋白粗提物。 生菌血腔毒素方面的报道还不是很多,研究较深入 )*, 血腔毒素的纯化 的有来自发光杆菌 !,&*&.,(/012 %1#-’$24$’2 RM7 菌 )*,*) 血腔毒素 6’78 蛋白的分离纯化:用 P8\硫 株的 63 毒素蛋白(L"#$+ $* (%@,MNNS;L(/3<CA&+ $* 酸铵盐析对M>G节中的胞内蛋白提取物进行初步分 (%@,MNNS;OA" $* (%@,MNNN;55&$+3*9Q"+04/+4 /+. 离,透析(7Y)后再经过 +/4-%$91KOJ 制备型凝胶电 L"#$+,G88M)、;35 基因表达产物(T/C"&+ $* (%@, 泳进一步纯化。蛋白质条带的定位及样品的洗脱: G88G),以及来自嗜线虫致病杆菌的 6,’78毒素蛋白 从胶板的两边各切下一个泳道的胶条,用考马斯亮 (L&"#+ $* (%@,G88U)和溶血素(L&-((/&. $* (%@,G88M)等。 蓝染色 P8 ;-+,剩余的胶片用保鲜膜密封保存于 嗜线虫致病杆菌 !LPM8 菌株是本实验室从来 7Y。根据染色胶条上 6’78 蛋白条带位置,从未染 自河北省土壤的线虫体内分离得到的昆虫病原线虫 色的胶片上切下相应位置的条带,加液氮充分研碎 E期 杨 君等:嗜线虫致病杆菌血腔毒素T1$(对大蜡螟幼虫体内酶活和中肠组织的影响 E(. 后再加入适量的 !"#缓冲液,$% &’ ((( ) *+,-离心 &= &(Z$ +20*C毒扁碱)与(KD +C (K($ +20*C 1R IK( .( +,-除去凝胶碎片,回收上清液用 /,00,12)3 . 456 磷酸缓冲液混合,加入(K& +C酶液后在.(%中水浴 73-8),92- :/;. 离心超滤管透析浓缩,最后经 <= .( +,-,再加入& +C显色剂(B=十二烷基硫酸钠溶 -68,>3;!?@A和&’= #5#;!?@A进行鉴定分析。 液和&=坚固蓝 "盐溶液以BX’的比例混合),室温 !"#"$ 血腔活性测定:毒素分离提纯过程中活性的 静置.( +,- 后测定其 M5 值。根据";萘酚标准曲 E(( 监测采用注射法。用微量进样器(/7:’B!C)将待 线(与显色剂结合后,";萘酚浓度与 M5 值呈线性 E(( 测样品B!C 从 B龄大蜡螟幼虫的第一对腹足之间 关系)计算出每毫升酶液生成的";萘酚数,结合酶液 注入血腔,将注射后的试虫放在铺有滤纸的培养皿 蛋白含量计算其比活力,用";萘酚!+20(* +,-·+L)表 (直径 D 9+,&( 头*皿)中。对照组注射同等剂量的 示。每个处理重复.次。 !"#样品,每个样品 . 次重复,每个处理注射 .( 头 !"&"% 多酚氧化酶活性的测定:参照 PSF66N6 和 试虫。注射后放在 ’E%培养箱中,每隔 E F检查大 76S,G(6 &DI$)的方法并略作修改。在 &KB +C (K(B 蜡螟的死亡情况和症状,连续观察 $< F,记录其体 +20*C 1REK<的磷酸缓冲液中加入&KB +C(K’ +20*C 色、行为等方面的变化。 邻苯二酚作为底物,再加入 (K& +C酶液混匀,’B% !"#"# 蛋白含量的测定:使用 ")6GH2)G(&DIE)蛋白 水浴中振动反应 &B +,- 后,于 $’( -+ 处测定 M5 浓度测定法,以牛血清白蛋白("#?)作为标准建立 值。根据酶液中蛋白质的含量,酶活力 [用每毫克 标准曲线。 酶液每分钟所引起的 M5值变化表示[[:M5(* +,-· !"#"% J68,>3;!?@A 和 #5#;!?@A:电泳方法、电泳 +L)]。每个处理重复.次。 缓冲液、染色液和脱色液(考马斯亮蓝染色)的配制 !"&"& 数据统计处理方法:对.种酶活力的测定数 参照郭尧君(’((&)方法。电泳图像的分析应用捷达 据均通过5!#数据处理软件完成。采用5O-96-\S新 凝胶分析软件。 复极差法(! W (K(B),数据均为平均数 ] 标准误 !"% 血腔毒素对大蜡螟血淋巴的影响 (+36-] "#)。 根据 &K.K’ 的方法,以 E<KB$ -L*头(C5B()的剂 !"’ 中肠组织石蜡切片的制作及观察 量处理试虫。在试虫死亡前分时段(.( +,-,&,’,$, 按照 &K.K’ 的方法,以 C5 的剂量处理试虫。 B( <,&’,’$,.E和$< F)收集血淋巴并观察。对于血细 参照 &KBK& 取各时段处理组和对照组试虫,在预冷 胞的变化是通过常规涂片和相差显微镜(M0N+1O3 的!"#缓冲液中解剖出中肠,经过布安氏固定液 PQI&)进行观察。 ("2O,-’SH0O,G)(苦味酸饱和液、$(=甲醛和冰醋酸之 !"& 血腔毒素对大蜡螟#种酶活性的影响 比为IB*’B*B)固定、酒精逐级脱水、二甲苯透明、石 !"&"! 试虫处理和酶液提取:采用 &K.K’ 的方法, 蜡包埋(B<% ^ E(%)和组织切片(切片厚度 E ^ < 以E<KB$ -L*头的剂量注射试虫。在第 E,&’,’$,.E +)后,用苏木精;伊红双染法(R3+682_N0,-;A2S,-)染 ! 和$< FB个时间点随机采集对照组和处理组存活幼 色封片。使用光学显微(M0N+1OS 7Q.&)照相系统观 虫。在玻璃匀浆器中加入与每种酶相对应的预冷磷 察并拍照。 酸缓冲液(按照每克虫重加入 B +C缓冲液)后冰浴 匀浆。匀浆液离心($%,&’ ((( )*+,-,’( +,-)后除 $ 结果与分析 去表面的白色絮状物,取上清液作为粗酶液。 !"&"$ 乙酰胆碱酯酶活性的测定:采用 A00+6- 等 $"! 血腔毒素的聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 (&DE&)的方法略有改进。在’KE +C磷酸缓冲液(1R 通过.(=硫酸铵饱和度盐析和制备型凝胶电 IK$)中加入 (K& +C 酶液和 (K& +C ?S9F;5TJ" 泳,从嗜线虫致病杆菌 R".&(菌株胞内蛋白提取物 (6938N08F,29F20,-3 G,8F,2;U,S;-,8)2U3-V2,9 69,G,体积比W 中回收到的 T1$(蛋白再经 <= -68,>3;!?@A进行纯 &X’)后,’B%下反应&B +,-,用(KB +C&Y&(Z. +20*C 度鉴定,结果显示本方法获得的 T1$( 蛋白成分单 毒扁豆碱终止反应,于$&( -+下测量光吸收的变化 一,没有其他杂带出现(图&:?)。经&’= #5#;!?@A 值。酶活力以M5(* +,-·+L)表示。每个处理重复 . 分析,T1$(蛋白仍显示为单一条带(图 &:")。根据 次。 标准蛋白/6)43),应用凝胶分析软件计算 T1$(的分 !"&"# 羧酸酯酶活性的测定:参照 >6- ?S13)3- 子量约为$’ 456。 (&DE’)的方法。B +C .Y&(Z$ +20*C";醋酸萘酯(含 D%$ 昆虫学报 )*+’,&+%"%$%-.*’/.&.*’ F!卷 !"# 血腔毒素对大蜡螟幼虫血淋巴的影响 健康大蜡螟幼虫的血淋巴是浅黄色的(图 I: 0),暴露于空气中会变成黑色(大约 I% K+()(图 I: M);以 H5 的剂量注射 "#$% 的大蜡螟血淋巴也是 F% 浅黄色的(图I:>),与对照无差异,并且暴露于空气 中也发生黑化(图I:5),但黑化时间比对照滞后约! L。分时段收集大蜡螟幼虫的血淋巴于相差显微镜 下观察,并没有发现"#$%对血细胞的形态造成明显 的影响(图$)。 图! "#$%蛋白&’ ()*+,-./012和!3’ 454./012 6+78 ! &’ ()*+,-./012)(9!3’ 454./012:;"#$% 0:"#$% 的 &’ ()*+,-./012 纯度鉴定 &’ ()*+,-./012 :; #<=+;+-9"#$%;>:"#$%的!3’ 454./012分析!3’ 454./012 )()?@A+A:;"#$%8 !:"#$%;B:B)=C-=8 图I "#$%对大蜡螟幼虫血淋巴的影响 !"! 大蜡螟幼虫的病症观察 6+78 I "L--;;-Q*:;"#$% :(*L-L-K:?@K#L 以D&EF$ (7G头(H5 )剂量的 "#$%注射大蜡螟, :; !8 "#$$%&#$$’ ?)=,)- F% 0:对照新鲜血淋巴M:(*=:?(;=-AL);>:"#$%处理后的新鲜血淋巴 注射后的试虫随即开始快速爬动,表现出兴奋症状; T-K:?@K#L:;"#$%*=-)*K-(*(;=-AL);M:对照血淋巴(体外放置I% IJ$ K+(后大部分试虫运动减少,头胸部翘起,口器 K+()"L-(:=K)?L-K:?@K#L-U#:A-9*:*L-)+=;:=I%K+(;5:"#$%处理 持续一张一合;!% K+(后试虫表现为强烈的痉挛症 后的血淋巴(体外放置3 L)"L- L-K:?@K#L :; "#$% *=-)*-9 ?)=,)- 状,足和口器微颤,体躯前后抽搐,有的扭曲翻滚,最 -U#:A-9*:*L-)+=;:=3L8 后试虫行动缓慢直至死亡。刚刚死亡的试虫身体发 软但无脱水现象。与对照组相比,体色不发生改变 (图3:0和 >)。继续放置 D L 后,试虫身体从其头 部到胸部变黑,但身体其他部分不变色(图 3:M 和 5)。当以不低于(N%O%E%3)(7G头的剂量注射 "#$%, 大蜡螟幼虫均在3% K+(内死亡。 图$ "#$%对大蜡螟幼虫血细胞的影响 6+78 $ "L--;;-Q*:;"#$% :(*L-L-K:Q@*-A :; !8 "#$$%&#$$’ ?)=,)- 0:对照血细胞 M:(*=:?;>:注射 "#$% 后 !3 L 的血细胞 "L- L-K:Q@*-A:; !E "#$$%&#$$’ ?)=,)-+(R-Q*-9S+*L"#$%)*!3L8 !"$ 血腔毒素对大蜡螟幼虫体内#种酶活性的影响 以 "#$%蛋白的致死中量注射大蜡螟F龄幼虫, 图3 大蜡螟幼虫注射"#$%后的体色变化 然后对幼虫体内羧酸酯酶、乙酰胆碱酯酶和多酚氧 6+78 3 ML)(7-:;*L-P:9@Q:?:=);*-=+(R-Q*+(7"#$% 化酶的活性变化进行了测定。结果显示,在处理后 +(*: !8 "#$$%&#$$’ ?)=,)- !3JID L,"#$% 对大蜡螟体内羧酸酯酶的激活作用 0:对照M:(*=:?;>:注射 "#$%后刚死亡的大蜡螟幼虫 "L- ;=-AL 显著((V%E%F),并且活性表现为随时间增加而增 Q)=Q)A-A:; !8 "#$$%&#$$’ ?)=,)-+(R-Q*-9 S+*L "#$%;M,5:注射"#$% 死亡后DL的大蜡螟幼虫DLQ)=Q)A-A:; !8 "#$$%&#$$’?)=,)-+(R-Q*-9 高(图F);"#$%对乙酰胆碱酯酶的激活作用更加明 S+*L"#$%8 显,在所取样的 F 个时间点中,"#$% 处理组与 />4 处理组都表现出显著差异(( V%E%F)(图 D);但是, K期 杨 君等:嗜线虫致病杆菌血腔毒素!"#$对大蜡螟幼虫体内酶活和中肠组织的影响 K$- !"#$蛋白对于多酚氧化酶的活性显示出较高的抑 !"# 血腔毒素对大蜡螟幼虫中肠的影响 制作用,除了处理后 %& ’外,其余时间点处理组幼 用()*和 !"#$蛋白分别注射-龄大蜡螟幼虫, 虫体内多酚氧化酶的活性明显低于 ()* 对照组(! 通过对不同处理和不同时间进行中肠取样,经组织 +$,$-),并且从第 %& ’开始 !"#$ 的抑制作用有越 切片显微观察发现:()* #N ’ 处理组(图 N:L,其余 来越强的趋势(图.)。 时间段 ()*处理的大蜡螟幼虫中肠与 #N ’ 基本一 致)的大蜡螟幼虫中肠细胞排列紧密,围食膜((O) 清晰可见。在 !"#$ 处理 %& ’(图 N:))的中肠切片 已经发现部分柱状细胞开始伸长变形,散乱脱落。 !"#$处理&# (’ 图 N:3)围食膜消失,肠壁细胞极度 拉长变形,病变加重。到#N (’ 图N:F),中肠发生完 全病变,中肠细胞排列紊乱,大量细胞脱落。 $ 讨论 图- 大蜡螟-龄幼虫在不同时段羧酸酯酶活力的变化 嗜线虫致病杆菌一旦进入到昆虫血腔,首先需 /012 - 34564780908:0; "2 #$%%&’$%%( <4594= 要克服昆虫的免疫反应,然后开始增殖并产生多种 0;>=78=?@08’!"#$ 4;?()* 柱上不同字母表示差异显著)45 5="5=A=;8AB=4; C )*(’DE), 毒素,在短时间内就会引起昆虫死亡。)H@=; 等 F0GG=5=;8<H@=574A=<=88=5A0;?0748=A01;0G074;8?0GG=5=;7=AI=8@==;?0GG=5=;8 (%PPN)从发光杆菌 !2 %+#,’$-.$’- Q%# 的胞外分泌 85=48=?<4594=(!+$,$-,J*F);下图同!’=A4B=I=<H@2 物中分离纯化出一种高分子量蛋白复合物———!7 毒素,该蛋白复合物同时具有血腔注射和口服杀虫 活性。随后,与编码 !7蛋白类似的 R"8杀虫基因簇 又从 /2 ’$#(0&12,%( 中被发现了(OH514; $0 (%2, &$$%;*=51=4;8 $0 (%2,&$$E),其编码的 S"8蛋白也是 大分子蛋白复合体,但是 S"8 没有表现血腔注射活 性。因为自然状态下,共生菌产生的任何胃毒素都 被认为应该在昆虫血腔一侧起作用,所以到目前为 止仍然不清楚S"8在嗜线虫致病杆菌致病过程中所 起的作用。)5H@; 等(&$$#)从嗜线虫致病杆菌 L&# 图K 大蜡螟-龄幼虫在不同时段 中克隆得到 8R"#$ 基因,该基因的表达产物是一种 乙酰胆碱酯酶活力的变化 分子量为#& TF4的蛋白———!R"#$,对大蜡螟幼虫具 /012 K L7’64780908:0; "2 #$%%&’$%%( 有很强的血腔注射活性,与本实验从嗜线虫致病杆 <4594=0;>=78=?@08’!"#$ 4;?()* 菌U)E%$细胞内获得的蛋白 !"#$很相似。Q=A8=5; I<H880;1 检测结果表明,!R"#$ 与 !"#$ 属于同源蛋 白,由于!"#$蛋白的氨基酸序列(V=;)4;T 477=AA0H; ;WBI=5:L)XKN#%N)与已知 !R"#$蛋白存在&个氨基 酸的差异,所以 !"#$ 应为一种新的蛋白(杨君等, &$$N)。)5H@;等(&$$#,&$$K)是利用构建粘粒文库 的方法先克隆基因再通过表达获得的 !R"#$ 蛋白。 本研究利用盐析和制备型非变性凝胶电泳等方法先 得到了蛋白后确定基因,现在随着蛋白质组技术的 图. 大蜡螟-龄幼虫在不同时段 发展,从分离纯化蛋白再到确定基因的途径被越来 多酚氧化酶活力的变化 越多的应用(邹勇等,&$$.),特别是类似 !"#$ 这样 /012 . (M4780908:0; "2 #$%%&’$%%( <4594= 的单体蛋白,本文的方法也是具有可操作性的。 0;>=78=?@08’!"#$ 4;?()* 在昆虫体内,酯酶主要负责正常的脂类代谢和 L%L 昆虫学报 4*(’5&(%"%$%0+*’1+&+*’ ;E卷 图! "#$%蛋白对大蜡螟幼虫中肠病理学影响 &’() ! *’+,-#.,/-0-(’1.023321,+-3"#$% #4-,2’5-5,/26’7(8,-3 !) "#$$%&#$$’ 0.49.2 所有图片均为幼虫中肠纵切,标尺长:;!6。<00 ’6.(2+.420-5(’,87’5.0 +21,’-5+,/4-8(/ ,/242(’-5 -3 ,/26’7(8,+-3 0.49.2 ’5-180.,27 =’,/ 2’,/24>?@-4"#$%;+1.02A.4B:;!6) <:对照组中肠C-5,4-0;?,C,D:"#$%处理E:,:$和$!/的幼虫中肠组织F.49.26’7(8,,’++82+., E:,:$.57$!/.3,24"#$%’5G21,’-5,42+#21,’920H) ?I:底膜?.+2625,626A4.52;J:中肠上皮细胞I’7(8,2#’,/20’86;F:肠腔I’7(8,08625; >I:围食膜>24’,4-#/’16.,4’K) 外源脂类化合物的解毒代谢等。本实验显示注射 此"#$%对昆虫神经系统的影响还有待于进一步研 "#$%的大蜡螟 ; 龄幼虫体内羧酸酯酶活性明显增 究。多酚氧化酶(>N)是昆虫体内很重要的免疫因 强,这与前人测定昆虫病原线虫对大蜡螟体内酯酶 子,在昆虫体内是以无活性酶原 >>N 形式存在的, 活性的影响结果基本一致(丁晓帆等,:%%;;韩冰 当病原体入侵时通过 >>N 级联被活化,与昆虫体内 等,:%%L)。"K#$%的研究表明其对靶标昆虫脂肪体 黑色素的形成有关(时超美,:%%%)。有研究表明寄 具有明显的破坏作用(?4-=5 #( ’$),:%%L),虽然本研 生性昆虫、昆虫病原细菌和真菌都能够抑制寄主昆 究没有观察到"#$%对脂肪体的明显影响,但是"#$% 虫体内多酚氧化酶的活性(?2245,+25 #( ’$),:%%%; 处理后幼虫体内酯酶活性的增强间接反映出 "#$% @/20AH #( ’$),:%%%)。注射 "#$%后,大蜡螟体内多酚 对大蜡螟脂肪体是有影响的。酯酶活性增强表明大 氧化酶的活性受到明显的抑制,大大降低了其免疫 蜡螟体内脂类物质分解活动增强,从而可能引起脂 力,直至试虫死亡也没有诱发黑化反应。对大蜡螟 肪体的结构破坏,导致内部组织解体,加快昆虫死 幼虫血淋巴的观察也证实 "#$% 具有延缓黑化的作 亡。通常乙酰胆碱酯酶被认为是神经毒剂的靶标 用。本研究未能在光学显微水平上观察到 "#$% 对 酶,这类杀虫剂通过抑制其活性而引起靶标害虫兴 大蜡螟幼虫血细胞形态方面的影响,但 "#$%能够在 奋和痉挛,最终麻痹死亡(张静等,:%%M),"#$% 引起 一定程度上降低试虫血细胞的数量。由此,推测 的大蜡螟幼虫的中毒症状如杀虫速度快、痉挛等正 "#$% 可能与共生菌的免疫抑制有关。 好与之基本相符。但是,对试虫体内乙酰胆碱酯酶 许多已知的杀虫毒素如苏云金芽胞杆菌 活性的测定结果却表明 "#$% 对乙酰胆碱酯酶不仅 )’*+$$,-(.,/+&0+#&-+- 的"O内毒素("O 257-,-K’5+)和来 没有表现抑制作用,反而引起其活性显著增强。因 源于链霉菌 1(/#2(%"3*#- 的胆固醇氧化酶(1/-02+,24-0 =期 杨 君等:嗜线虫致病杆菌血腔毒素4789对大蜡螟幼虫体内酶活和中肠组织的影响 =9Q !"#$%&’),它们的杀虫作用靶标都是昆虫中肠 1==;0 (()%*+,-./ !" #$0,1223)。已有研究显示,来自昆虫 (.!</>G,N%! @4,M#/’& GC,@+A-.&B CD,G%&B O:,;9980 @ /!?’) &’*.’B’$7.!B’#/B!"#/6.!EBA’#/&’*B7%BA!H’/#*,%*B’.#-E1!-’)2#3(.+ 病原线虫共生菌的多种毒素如 4* 毒素、5*6 毒素、 -!8#"’&2*$#0 ;0 4*’$0 ?2!80,;Q2:18R2RS18=910 4"789毒素等注射到昆虫血腔后都表现出对昆虫中 :%,!./OD,Z%B’.6#’)$ F,>#)?%NO,@- NO[,>A%.E%>,66.’/*AVN!/&B%/B 肠组织的破坏作用(()%*+,-./ !" #$0,1223;:%,!./ !" CM,;99;0 @ &#/H)’ 72’"’)2#3(.+ H’/’,8#@!+ /#"!)&*$$#)+ <$’&&> #$0,;99;;(.!</ !" #$0,;998,;99=),本实验也观察 (8/<),%))!<&:+/2!)*/2*#/’$*B!7’.&#&B<#BA#/%/$+#))#/&’*B&0 OF@>, 到了 4789对大蜡螟中肠组织的破坏作用。此外,应 22:19Q8;S19Q8Q0 用绿色荧光蛋白标记的方法也证实嗜线虫致病杆菌 :#/H\P,]#/5>,]#-]>,;99R0 G66’*B&!6’/B!E!7%BA!H’/#*/’E%B!$’&!/ ’/’.H’B#* *!/B’/B& #/ A’E!)IE7A !6 A#$$!)*# 8!$$’-!$$#0 ;’.)-#$ ’< 和发光杆菌对海灰翅夜蛾 %&’(’&"!)# $*""’)#$*+ 和烟草 B#-C*-=9=)*/.$".)#$D-*6!)+*">,;3(U):8US8Q0[丁晓帆,林茂松, 天蛾 ,#-(./# +!0"# 幼虫中肠上皮细胞具有亲和性 刘亮山,;99R0 几种昆虫病原线虫对大蜡螟幼虫血淋巴及其能 (>#)?% !" #$0,;99;;>#*%.$ !" #$0,;998)。由此推断昆 源物质含量的影响0 南京农业大学学报,;3(U):8US8Q] 虫病原线虫共生菌的作用靶标可能位于昆虫中肠。 G))E%/K],N!-.B/’I L:@,@/$.’&^D.,P’%BA’.>B!/’ C5,12=10 @/’< 但是,无论是 4789 还是 4"789均未表现出口服杀虫 %/$ .%7#$ *!)!.#E’B.#* $’B’.E#/%B#!/ !6 %*’BI)*A!)#/’&B’.%&’ %*B#?#BI0 4*’/2!80 72#)8#/’$0,Q:33S2R0 活性(未报导),即该类毒素在消化道内不能发挥其 66.’/*AVN!/&B%/B C,:!<)#/H F,Z%B’.6#’)$ @C,;99Q0 J/&’*B#*#$%) B!"#/& 破坏中肠消化道的活性,只可能与消化道内的环境 6.!E 72’"’)2#3(.+ ,%*B’.#% %/$ BA’#. 7!B’/B#%) -&’ #/ %H.#*-)B-.’0 有关。杨君等(;993)的研究结果显示出 4789 是不 E’0*/’-0,82:8U=S8R10 被分泌到细胞外的。那么,这种只存在于细胞内的 66.’/*AVN!/&B%/B CM,(!<’/ :D,;9910 F!?’) #/&’*B#*#$%) B!"#/& 6.!E 杀虫蛋白是如何起到杀虫作用的呢?我们推测 /’E%B!$’V&IE,#!B#*,%*B’.#%0 ?!$$,’$0 F*<!%/*0,RQ:3;3S3UU0 4789可能是通过细胞自溶被释放到昆虫血淋巴中 K-!]F,P%B#HCW!,W..K],>*A%6’.(Z,>B.#*+)%/$D@,>-+A%7#/$%L, Z!!$&<!.BA @4,O’B’)) DL,12220 72’"’)2#3(.+ $.8*-!+/!-+ ZV18 的。到目前为止,昆虫病原线虫共生菌对寄主昆虫 #/&’*B#*#$%)%*B#?#BI*!/&#&B&!6%B)’%&BB<!&#E#)%.,-B$#&B#/*B7.!B’#/&0 的致病机理还不是很清楚,对这类毒素的深入研究 O-.#6#*%B#!/ %/$ *A%.%*B’.#X%B#!/ !6 B!"#/ @ %/$ B!"#/ (0 ;0 4*’$0 将有助于揭示昆虫病原线虫共生菌与寄主昆虫之间 ?2!80,;Q8:23U=S238;0 的关系。 K-![D,;9910 G"7’.#E’/B%)4’*A/#T-’!6 O.!B’#/ G)’*B.!7A!.’&#&0 >*#’/*’ O.’&&,(’#_#/H0 R8S1RQ0[郭尧君,;9910 蛋白质电泳实验技术0 参 考 文 献(!"#"$"%&"’) 北京:科学出版社0 R8S1RQ] M%/ (,N!/H (,]#- [N,P- M(,;99=0 G66’*B !6 BA’ $#66’.’/B @+A-.&B CD,(!’E%.’ FG,12290 (#!)!HI %/$ 4%"!/!EI !6 1!-’)2#3(.+0 ’/B!E!7%BA!H’/#* /’E%B!$’ &B.%#/& !/ *%.,!"I)’&B’.%&’ %*B#?#BI !6 J/:K%-H)’. C,L%I% ML ’$&0 G/B!E!7%BA!H’/#* F’E%B!$’& #/ A#$$!)*#8!$$’-!$$#0 ;’.)-#$ ’< 9-2.* 9=)*/.$".)#$ %/*!-/!+,U8(Q): (#!)!H#*%)N!/B.!)0 N0C0N0 O.’&&,(!*%C%B!/,P)!.#$%0 QRS290 1U2U,1U2=0[韩冰,从斌,刘亚臣,付海滨,;99=0 不同品系昆 (’’./B&’/ (4,D%E’& @@,NA.#&B’/&’/ (5,;9990 K’/’B#*& !6 E!&T-#B! 虫病原线虫对大蜡螟羧酸酯酶活性的影响0 安徽农业科学,U8 ?’*B!.*!E7’B’/*’0 ,*/)’3*’$0 ,’$0 4*’$0 5!60,=8:11RS1UQ0 (Q):1U2U,1U2=] ()%*+,-./5,K!)-,’?%G,(!<’/:,66.’/*AVN!/&B%/BCM,12230 @/!?’) J&A%%I%J,N%&#$%DG,12Q80 :#’B%.I4M=989%)B’.&*!E7!&#B#!/%/$’/XIE’ #/&’*B#*#$%) B!"#/ 6.!E 72’"’)2#3(.+ $.8*-!+/!-+,4!"#/ *!E7)’" % %*B#?#BI!6A!-&’6)I)%.?%)*-B#*)’0 7!+"*/0 4*’/2!80 72>+*’$0,8:838 (4*%),%/$ #B& A#&B!7%BA!)!H#*%) ’66’*B& !/ BA’ E#$H-B !6 ,#-(./# S8290 +!0"#0 9&&$0 :-6*)’-0 ,*/)’3*’$0,=8:U9U=SU9810 L%I%ML,K%-H)’. C,122U0 G/B!E!7%BA!H’/#* /’E%B!$’&0 9--.0 5!60 (!<’/:,C!*A’)’%-4@,()%*+,-./5,@/$.’’?W,K!)-,’?% G,(A%.B#% :-"’8’$0,U3:131S;9=0 C,66.’/*AVN!/&B%/B CM,12230 J/&’*B#*#$%) B!"#/&6.!EBA’,%*B’.#-E ]%?#/’5:,>B.%/$5C,;99;0 J/&’*BA’E!*IB’&%/$BA’#..!)’#/#EE-/#BI0 72’"’)2#3(.+$.8*-!+/!-+0 %/*!-/!,;39:;1;2S;1U;0 G-+!/"4*’/2!80 ,’$0 4*’$0,U;:1;2RS1U920 (.%$6!.$ 55,12Q=0 @ .%7#$ %/$ &’/&#B#?’ E’BA!$ 6!. BA’ T-%/B#B%B#!/ !6 5!.H%/D@Z,>’.H’%/B5,G))#&:,W-&)’I5,D%..’BB O,;9910 >’T-’/*’ E#*.!H.%ET-%/B#B#’& !6 7.!B’#/ -/#B#X#/H BA’ 7.#/*#7)’ !6 7.!B’#/ $I’ %/%)I&#&!6#/&’*B#*#$%)H’/’&6.!E 1!-’)2#3(.+-!8#"’&2*$.+ O5PJ;2=0 ,#/$#/H0 9-#$0 4*’/2!80,Q;:;83S;R80 9&&$0 :-6*)’-0 ,*/)’3*’$0,=Q:;9=;S;9=20 (.#))%.$D,C#,’#.! N,(!’E%.’ F,(.’AY)#/ 5,K#?%-$%/ @,;9910 4<! 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